Amplificación e identificación molecular del
polimorfismo genético de los genes de color Kitlg
y Tyrp1b en los peces de la amazonía peruana
Symphysodon aequifasciatus aequifasciatus y Festivus
(Mesonauta festivus) (Perciformes: Cichlidae)
Molecular amplification and identification of genetic
polymorphism of color genes Tyrp1b and Kitlg in the Peruvian
Amazon fish Symphysodon aequifasciatus aequifasciatus and
Festivus (Mesonauta festivus) (Perciformes: Cichlidae)
Recibido: enero 26 de 2015 | Revisado: febrero 26 de 2015 |
Aceptado: marzo 30 de 2015
Carlos Scotto1
María Cristina Miglio2
Elsa Vega2
Beatriz Angeles2
1 Laboratorio de Mejora Genética y Reproduc-
ción Animal, Facultad de Ciencias Naturales y Matemá-
ticas, Universidad Nacional Federico Villarreal, Calle
Río Chepén s/n. El Agustino. Lima -Perú. Email: car-
losscottoespinoza@gmail.com
2 Facultad de Pesquería. Universidad Nacional
Agraria La Molina. Avenida La Molina s/n. La Molina.
Lima – Perú. Email: bangeles@lamolina.edu.pe
Ab s t r act
The goal of this research was the removal of non invasive
nuclear DNA from gill tissue in Amazonian species Disco
(Symphysodon aequifasciatus aequifasciatus) and Festivus
(Mesonauta festivus). The PCR amplification and
molecular analysis of genetic polymorphism of the color
genes Tyrp1 and Kitlg using restriction enzymes was
achieved. It was possible to amplify the gene sequence
Kitlg (band approximately 1400 bp), but it was not
possible to amplify the sequence of Tyrp1 gene for any
studied species. It was identified a cleavage site in the
sequence of Kitlg gene in Disco fish with the restriction
enzyme Mse I from 200 to 300 bp and a band of about 500
to 1000 bp with the restriction enzyme Xho I. It was not
possible to identify any cut site in the Kitlg gene sequence
with any of the restriction enzymes tested in fish Festivus
identified.
Keywords: Symphysodon, Mesonauta,
Polymorphism, Kitlg, Tyrp1b, Amazon fish.
Re s u m e n
Esta investigación tuvo como objetivo principal la
extracción de ADN nuclear no invasivo de tejido
branquial en los peces amazónicos Disco (Symphysodon
aequifasciatus aequifasciatus) y Festivus (Mesonauta
Reaccfestivus), evitando producir daño al pez o su muerte.
Se logró la amplificación molecular por Reacción en
cadena de la polimersa (PCR) y el análisis del
polimorfismo genético de los genes de color Kitlg y
Tyrp1b mediante el uso de enzimas de restricción. La
amplificación de la secuencia del gen Kitlg permitió
obtener una banda de 1400 pb aproximadamente. No fue
posible amplificar la secuencia del gen Tyrp1 para
ninguna de las dos especies. Se identificó un sitio de corte
en la secuencia del gen Kitlg en la enzima de restricción
Mse I en peces Disco de 200 a 300 pb, y una banda de
aproximadamente 500 a 1000 pb con la enzima de
restricción Xho I. No se logró identificar ningún sitio de
corte en la secuencia del gen Kitlg con ninguna de las
enzimas de restricción analizadas en peces Festivus.
Palabras clave: Symphysodon, Mesonauta,
Polimorfismo, Kitlg, Tyrp1b, peces amazónicos.
| Cátedra Villarreal | Lima, perú | V. 3 | N. 1 | PP. 37-46 | enero-junio | 2015 | issn 2310-4767 37
Carlos Scotto, María Cristina Miglio, Elsa Vega, Beatriz Angeles
Introducción
Entre los grupos de peces ornamentales más
cotizados se encuentran los cíclidos. Estos peces
se encuentran distribuidos por todo el mundo, y
destacan por su belleza y colorido entre los
cíclidos sudamericanos. Esto último, debido a la
influencia de los factores medioambientales
adquirió formas diferentes, algunos de ellos,
como los discos y festivus, una forma circular o
alargada pero lateralmente comprimida. De este
tipo de peces son los Discos los que gozan de
mayor preferencia en el aspecto ornamental, por
presentar una mayor intensidad en tonos y
colores (Carvalho, 1993; Kullander, 1986).
Actualmente, la reproducción en cautiverio del
pez Disco se viene realizando principalmente en
países en los cuales este pez no es originario.
Así por ejemplo, en Tailandia
y Singapur existen grandes centros de cultivo
de estos peces. También podemos encontrar
centros reproductores en Alemania, España,
Estados Unidos, México y Argentina que en
menor escala también ofrecen variedades de
este pez ornamental (Valdivieso, 2000).
En el Perú, país originario de este cíclido
solo se han tenido reportes aislados de
criadores en cuanto a su reproducción, no
figurando en ningún caso como productor y
proveedor de una determinada variedad
desarrollada en el Perú. Además, los discos
que son exportados, no son comercializados,
sino son empleados para realizar cruces con
variedades ya mejoradas, con la finalidad de
aumentar la variabilidad genética en los
híbridos y evitar la degeneración de las líneas
obtenidas (Bailly, 1999). De esta manera la
riqueza genética existente en nuestro país
viene siendo aprovechada y explotada en
otros países, los cuales iniciaron diversos
estudios de mejoramiento genético, selección
y estudios de biodiversidad en los cíclidos
ornamentales, siendo necesario la promoción
de centros de producción artificial de semilla
de esta y otras especies de importancia
comercial (Goldin, 2000) .
Al poder obtener individuos con mejores
rasgos fenotípicos utilizando técnicas
moleculares que identifiquen genes de interés
como es el caso de los genes de color de peces,
se podría incrementar el valor agregado de
varias de nuestras especies nativas ornamentales
con alto potencial para las exportaciones. Así
mismo, se evitaría la erosión genética por su
sobreexplotación al reproducirse en cautiverio e
iniciar programas de mejoramiento genético
para la obtención de líneas comerciales.
Este trabajo tiene como objetivo la
amplificación e identificación molecular del
polimorfismo genético de los genes de color
Kitlg y Tyrp1b en el pez Disco (Symphysodon
aequifasciatus aequifasciatus) y el pez Festivus
(Mesonauta festivus), que permitan dar las bases
genético-moleculares sobre las cuales se puedan
iniciar diversos estudios referidos a la
potenciación de la acuicultura ornamental, su
mejoramiento genético por selección y estudios
de biodiversidad ictícola en el Perú.
Materiales y Métodos
Los peces fueron seleccionados de un stock de
30 peces Disco (Symphysodon aequifasciatus) y
40 Festivus (Mesonauta festivus) obtenidos de
Iquitos, aclimatados en el Centro de
Investigación Piscícola (CINPIS) de la Facultad
de Pesquería de la Universidad Nacional
Agraria La Molina. La extracción de ADN,
procesamiento de muestras y amplificación
molecular se desarrolló en el Laboratorio de
Mejora Genética y Reproducción Animal de la
Facultad de Ciencias Naturales y Matemática de
la Universidad Nacional Federico Villarreal
(Lima, Perú).
Material biológico
Para el análisis inicial para la estandarización
de la técnica de extracción de ADN se utilizó
una población inicial de nueve ejemplares de
Discos (Symphysodon aequifasciatus) (Figura
1) y nueve ejemplares de Festivus
(Mesonauta festivus) (Figura 2), los cuales
fueron adquiridos en la ciudad de Iquitos y
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Amplificación e identificación molecular del polimorfismo genético de los genes de color Kitlg y Tyrp1b en los peces de la amazonía peruana
Symphysodon aequifasciatus aequifasciatus y Festivus (Mesonauta festivus) (Perciformes: Cichlidae)
trasladados y aclimatados por un periodo
de seis a ocho semanas en condiciones de
cautiverio.
Procesamiento de las
muestras Extracción de ADN
Se utilizó el Protocolo de extracción de ADN
de peces modificado de Lopera-Barreto
(2008) para lo cual se extrajo sangre periférica
por raspado branquial (Figura 3). Se detalla a
continuación el procedimiento seguido.
Se colocó cada espécimen con
mucho cuidado sobre una superficie
mojada con agua de pecera en una
Placa Petri grande.
Se levantó la branquia con una
aguja fina y se raspó ligeramente la
branquia rojiza para poder absorber
la sangre periférica.
La muestra de sangre se agregó en tubos
eppendorf de 1.5 ml. conteniendo 550ul
de solución de lisis.
Se calentó las muestras a 80ºC por cinco
minutos sin dejar hervir las muestras.
Se agregó 500 ml de Acetato de
Sodio 3 M.
Se mezcló las muestras por
inversión, no Vortex.
Se centrifugó a 12000 rpm por 5
minutos.
Se agregó 400 ul de la mezcla de
cloroformo y alcohol isoamílico (24:1).
Se separó en un nuevo tubo
eppendorf el sobrenadante.
Se agregó 500 ul de etanol
absoluto helado.
Se centrifugó por 5 minutos y
se eliminó el sobrenadante.
Se dejó secar el ADN a
temperatura ambiente por 18 horas.
Luego se resuspendió en buffer TE
para su análisis final y añadir NaCl a
una concentración final de 100mM.
Se añadió RNAasa a una concentración
de 100 ug/mL, se incubó por 3 horas a
37ºC y por último se almacenó las
muestras a -20ºC.
Preparación del gel de agarosa y
sembrado de muestras
Se disolvió la agarosa al 0.8% en un
beaker mediante calor en una
cocinilla eléctrica.
Se preparó la cámara electroforética
con sus peines respectivos.
Se vació la agarosa disuelta en la
cámara electroforética.
Se esperó hasta que se endurezca el
gel de agarosa (gelificación) y se
sacaron lospeines.
Se llenó con el Buffer de Corrida
hasta que cubra el gel de agarosa.
Se sembró cada muestra en los
pocillos del gel de agarosa.
Se conectó la cámara electroforética
a la fuente de poder a 220V.
Se dio el final de la corrida electroforética.
Se realizó la tinción del gel de
agarosa con Bromuro de Etidio.
Se visualizó el gel de agarosa en el
transiluminador UV
Determinación de la integridad del
ADN purificado
Se realizó la cuantificación del ADN purificado
mediante la comparación en una corrida
electroforética con un marcador de peso
| Cátedra Villarreal | V. 3 | No. 1 | enero -junio | 2015 | 39
Carlos Scotto, María Cristina Miglio, Elsa Vega, Beatriz Angeles
molecular para ADN, donde la concentración
de este era conocida. Se corrieron las
muestras de ADN en un gel de agarosa al
0.8% junto con el Marcador de Peso
Molecular de 100pb o DNA ladder de 15
fragmentos: 1500, 1400, 1300, 1200, 1100,
1000, 900, 800, 700, 600, 500, 400, 300, 200,
100 para poder determinar la integridad (solo
una banda) y la concentración del ADN
purificado de cada espécimen (Figura 4).
Diseño de primers de los genes Kitlg y Tyrp1
La secuencia de los primers fue para el Gen
Kitlg (Sense Primer:
CACCTGCTGCCCATCACCTA, Antisense
Primer: AAATCCTGGGCCTTCATGAG). Y
para el Gen Tyrp1 (Sense Primer:
GAGTGAGTGAAAGAGTGGGT, Antisense
Primer: CTCTTTTCTCATCGGCAGAC).
Las secuencias analizadas para construir
los primers para los dos genes se
obtuvieron del GenBank.
Respecto a la amplificación de las
secuencias de los genes Kitlg y Tyrp1 por
PCR se realizó el siguiente procedimiento:
Para la amplificación de cada secuencia
de los genes Kitlg y Tyrp1 se colocó en
un tubo eppendorf esterilizado los
siguientes volúmenes de reactivos en
frío: 6ul de ADN(10 ng/ul), 4ul de Buffer
(5X), 0.5ul de dNTPs (10ng/ml),
0.5ul de Primer 1 y 2, 0.03ul de
Taq, 8.5ul de agua destilada. Volumen
final 20ul.
Se colocó las muestras en el
termociclador y se procedió con el
amplificado.
Los parámetros utilizados para cada
reacción de amplificación por PCR
fueron: Desnaturalización (94°C x
95 segundos), Alineación (65°C x
55 segundos) y Extensión (72°C x 1
minutos y 10 segundos). Número
total de ciclos = 35.
Los primers fueron diseñados
utilizándose la información obtenida en
el GenBank de Internet de acceso libre
así como de publicaciones relacionadas
a los genes Kitlg y Tyrp1. Además, se
utilizó el siguiente programa de
computación Oligo 7 primers Analyser
(Emrich et al., 2003; Rychlik, 2007).
Digestión con enzimas de restricción
de las secuencias amplificadas
La amplificación se realizó a un volumen de
reacción de 50 uL. Volumen y cantidad de ADN
necesario para poder realizar posteriormente la
digestión de este ADN amplificado con enzimas
de restricción. Previamente el ADN amplificado
se corrió en una pequeña muestra de 5 ul en un
gel de agarosa al 1%, para poder determinar la
concentración aproximada del ADN a utilizar.
Los pasos fueron los siguientes:
En un tubo eppendorf se colocó el
siguiente mix de reacción de digestión
para todas las
enzimas de restricción
utilizadas: Producto de
amplificación
(10ul), Buffer 10X (2ul),
Enzima
de
restricción
(3ul),
Agua libre
de
nucleasas (17ul). Volumen final de
30 ul.
Se digirió el ADN amplificado con las
siguientes enzimas de restricción:
Xho I, Nhe I, Sph I y Mse I.
Se incubó en incubadora a 37ºC por
2 horas.
Se realizó una electroforesis de agarosa
al 1% para poder observar y determinar
los tamaños de los fragmentos
amplificados digeridos.
Resultados
En la Figura 5 se observan los resultados
de las corridas electroforéticas para los
amplificados por PCR para el gen Kitlg. Se
obtuvo una banda amplificada de 1400 pb que
era el tamaño esperado de acuerdo a la única
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Amplificación e identificación molecular del polimorfismo genético de los genes de color Kitlg y Tyrp1b en los peces de la amazonía peruana
Symphysodon aequifasciatus aequifasciatus y Festivus (Mesonauta festivus) (Perciformes: Cichlidae)
secuencia de pez disponible para éste gen en
el GenBank, todas las muestras amplificaron
tanto para Discos como para Festivus.
En la Figura 6 se aprecian los resultados de
las corridas electroforéticas para los
amplificados por PCR para el gen Tyrp1.
Ninguna muestra amplificó para este gen ni para
peces Discos ni para Festivus. Se esperaba una
banda de aproximadamente entre 300 a 500 pb
basados en la única secuencia disponible para
pez Cebra en el GenBank.
Se realizó la digestión con enzimas de
restricción solo para la secuencia de Kitlg
debido a que fue la única que amplificó.
En la Figura 7 se puede observar una
banda de aproximadamente entre 200 a 300
pb al ser digerida con la enzima de restricción
Mse I, y una banda menos definida entre 500
a 1000 pb de longitud al ser digerida con Xho
I. Para el resto de enzimas de restricción no se
encontró ningún sitio de restricción. Además,
solamente una de las muestra de Discos
presentó este sitio de corte. Ningún Festivus
presentó sitio de corte con las enzimas de
restricción utilizadas.
Discusión
Los peces Discos y Festivus son importantes
para la pesca de subsistencia y comercial en el
Perú. Sin embargo, son pocos los trabajos que
han sido elaborados hasta el momento con el fin
de conocer sus preferencias ambientales, su
explotación pesquera y el flujo genético de sus
poblaciones. El conocimiento de la dinámica de
las poblaciones es importante al momento de
elaborar planes de manejo pesquero, acuicultura
y conservación (Recuperación y protección).
La familia Cichlidae es uno de los mayores
grupos de peces teleósteos (casi todos ellos de
aguas continentales), que involucra alrededor de
2400 especies repartidas en Centro y Sud
América, África, Madagascar y sud de Asia.
Los cíclidos americanos comprenden
cerca de 550 especies (30% de la familia) y
son generalmente de ambientes ribereños
(Kullander, 1986). A diferencia a los
cíclidos africanos habitan mayormente
ambientes lacustres y solo 90-100 especies
viven en los ríos. La mayor diversidad
morfológica corporal de los cíclidos sud
americanos contrasta con aquella de los
famosos cíclidos del África, lo cual sugiere
que la radiación neotropical requirió de
mayor tiempo para tomar lugar que la
africana. Por lo tanto, no es sorprendente
ver la gran variedad de formas existentes en
la región del Neotrópico (Kullander, 1998).
La variación genética del grupo africano
es baja comparada al grupo neotropical,
extremadamente variable a nivel genético
molecular pero considerablemente inferior
en número de especies (Farias et al., 2000).
Existe poco conocimiento sobre la
estructura genética de los cíclidos y sus
variedades. Se han reportado cuatro formas
salvajes de Discos: Symphysodon (Heckel), S.
Aequiefasciata (Verde salvaje), S.A. Axelrodi
(Marrón salvaje) y S.A. Haraldi (Azul salvaje)
y cinco variedades cultivadas de disco
(Turquesa, Paloma, Ghost, Red azul Cobalto y
Sólido). Las tres subespecies de S.
aequifasciatus difieren uno del otro en el
color y el patrón de color; S. a. haraldi (el
Disco de color verde) posee nueve barras
verticales distintas sobre un fondo verdoso o
marrón claro, los individuos dominantes
poseen puntos rojos en la porción ventral de
su cuerpo; S. a. aequifaciatus (el Disco azul)
posee estriaciones Azul plateadas iridiscentes
en la cabeza y en la región dorsal del cuerpo.
S. a. axelrodi (el Disco de color marrón) es un
pez marrón rojizo que carece de barras
verticales excepto una barra que atraviesa el
ojo (Koh, et al., 1999).
Un grupo de investigadores procedentes
de varias universidades dirigidos por David
Kingsley del Instituto Médico Howard
Hughes publicaron en la revista Cell, piezas
de la maquinaria genética de la coloración
| Cátedra Villarreal | V. 3 | No. 1 | enero -junio | 2015 | 41
Carlos Scotto, María Cristina Miglio, Elsa Vega, Beatriz Angeles
en peces. Para el estudio utilizaron al pez
Gasterosteus aculeatus, para comenzar a
entender la base genética de los cambios de
los diferentes patrones de pigmentación. Y
encontraron que un gen llamado Kitlg que
estaba asociado con la herencia de la
pigmentación. Este gen permite la producción
de una proteína que ayuda a mantener a los
melanocitos -células que controlan la
pigmentación. Sin embargo, existen múltiples
regiones cromosómicas o genes duplicados
que contribuyen a la pigmentación en peces.
El Kitlg codifica receptores de factores de
crecimiento epidermal que es necesario para
la migración y sobrevivencia de los
precursores de melanocitos. Sus mutaciones o
variantes (alelos) pueden afectar la migración
de los melanocitos alterando el patrón de
coloración del animal. Así mismo, este gen en
peces se presenta por duplicado a diferencia
de los tetrápodos, lo cual puede hacer variar la
expresión fenotípica del patrón cromático
(Pielberg et al., 2002; Hultman et al., 2007).
Existen casi una docena de genes que
estarían contribuyendo al patrón cromático de
los peces como son: SLC24A5, Mir, Tyrp1,
Sox10, Mitf, Kitlg y Ednrb. Hoy se sabe que
algunas variantes del gen SLC24A4 están
asociadas con el color de ojos y cabello, una
variante del Kitlg está asociada con el color de
cabello, dos variantes del Tyrp1 están asociadas
con el color de ojos y las pecas, en humanos
(Rajaraman et al., 2007). Solamente el gen de
Kitlg amplificó en las muestras evaluadas
pudiéndose observar una banda de
aproximadamente entre 200 a 300 pb al ser
digerida con la enzima de restricción Mse I, y
una banda entre 500 a 1000 pb de longitud al ser
digerida con Xho I, logrando el objetivo de
identificar algún tipo de variabilidad genética en
la secuencia del gen de color Kitlg.
La gran diversidad y mercado de estas
especies de cíclidos ha quedado demostrada
en un estudio realizado en Singapur (Hassan
et al., 2002), en la cual, nuevas variedades
fenotípicas de peces Discos (Symphysodon
spp.) pueden ser obtenidas mediante los
cruces de especies naturales con las especies
cultivadas por periodos largo tiempo en muchos
países. Sin embargo por la diversidad genética
que posee esta especie se deben desarrollar
programas de mejoramiento genético específico
a mediano y largo plazo para empezar a exportar
nuevas variedades y preservar las variedades
peruanas ya existentes. Las técnicas moleculares
disponibles como la desarrollada en el presente
trabajo permitirán implementar rápidamente
técnicas de extracción de ADN y su
caracterización molecular debido a su bajo costo
y poco equipamiento de laboratorio,
promoviendo el desarrollo de Programas de
Mejoramiento o de Pre Mejoramiento Genético
en cíclidos comerciales (Lessa, 1992).
Por otro lado, el tejido a utilizarse para
estudios moleculares no debe causar la muerte
del animal sobretodo si se usará como futuro
reproductor. Los investigadores han utilizado
muestras de escamas, tejido branquial y sangre
como método no invasivo. Sin embargo, los
resultados de extracción de ADN no son muy
favorables del todo, porque están supeditados al
tamaño del animal por edad y sexo,
disponibilidad de volumen de muestra y acceso
al tejido sin causar daño irreversible, estrés o
muerte del animal. El presente estudio hizo una
combinación de “raspado de branquias” con
succión de sangre periférica obteniendo buenos
resultados de cantidad ADN para ensayos
moleculares sin producirle ningún tipo de daño
al animal siendo un objetivo logrado en esta
investigación.
Conclusiones
Se logró estandarizar un método no
invasivo para la obtención de sangre
periférica branquial para la extracción
de ADN de glóbulos rojos. La cantidad
ADN obtenido permitió realizar
ensayos moleculares de amplificación
por PCR y digestión con enzimas de
restricción sin producir ningún tipo de
daño al animal y/o muerte.
42 | Cátedra Villarreal | V. 3 | No. 1 | enero -junio | 2015 |
Amplificación e identificación molecular del polimorfismo genético de los genes de color Kitlg y Tyrp1b en los peces de la amazonía peruana
Symphysodon aequifasciatus aequifasciatus y Festivus (Mesonauta festivus) (Perciformes: Cichlidae)
Se amplificó por PCR la secuencia
del gen Kitlg cuya banda fue de
1000 pb aproximadamente.
No se consiguió amplificar por PCR
la secuencia del gen Tyrp1.
Probablemente debido a que esta
secuencia tanto para Discos como
para Festivus, posee un región muy
variable en su secuencia nucleotídica
que impidieron la amplificación.
Se encontró un sitio de corte en la
secuencia del gen Kitlg con la enzima
de restricción Mse I en peces Disco y
cuya banda midió entre 200 a 300 pb
aproximadamente. Y se identificó una
banda de aproximadamente entre 500
a 1000 pb con la enzima de
restricción Xho I.
No se logró identificar ningún sitio de
corte en la secuencia del gen Kitlg con
ninguna de las enzimas de restricción
analizadas en peces Festivus.
Las poblaciones correspondientes a
Festivus, poseen una estructuración
poblacional probablemente más
homogénea que la población de
Discos al no encontrarse variabilidad
alguna en su secuencia nucleotídica.
Agradecimiento
Agradecemos a CONCYTEC el financiamiento
del proyecto Nº320-2007-CONCYTEC.
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Anexos
Figura 1. Ejemplar de Disco (Symphysodon aequifasciatus) utilizado en la extracción de ADN.
Figura 2. Ejemplar de Festivus (Mesonauta festivus) utilizado en la extracción de ADN.
44
Amplificación e identificación molecular del polimorfismo genético de los genes de color Kitlg y Tyrp1b en los peces de la amazonía peruana
Symphysodon aequifasciatus aequifasciatus y Festivus (Mesonauta festivus) (Perciformes: Cichlidae)
Figura 3. Ejemplar de Festivus con la branquia abierta y succión de la sangre del tejido de la agalla.
Figura 4. Determinación de la integridad del ADN purificado con una sola banda y su
comparación con el marcador de peso molecular
Figura 5. Amplificación por PCR de la secuencia del gen Kitlg (banda amplificada de 1000 a 1500
pb aproximadamente). Especímenes de peces Discos (1 al 7) y de Festivus (8 al 14). (M =
Marcador de peso molecular).
| Cátedra Villarreal | V. 3 | No. 1 | enero -junio | 2015 | 45
Carlos Scotto, María Cristina Miglio, Elsa Vega, Beatriz Angeles
Figura 6. Amplificación por PCR de la secuencia del gen Tyrp1 (no hubo banda amplificada).
Especimenes de Discos (1 al 7) y de Festivus (8 al 14). (M = Marcador de peso molecular).
Figura 7. Digestión con enzimas de restricción de la secuencia del gen Kitlg con cuatro enzimas de
restricción: Nhe I (Superior izquierdo), Xho I (Inferior izquierdo), Sph I (Superior derecho) y Mse
I (Inferior derecho). Especímenes de Festivus (1, 2 y 3) y de Discos (4, 5 y 6). (M = Marcador de
peso molecular).
46 | Cátedra Villarreal | V. 3 | No. 1 | enero -junio | 2015 |