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ORIGINAL ARTICLE / ARTÍCULO ORIGINAL
TOXICITY OF AGAVE AMERICANA AND FURCRAEA ANDINA (ASPARAGACEAE) ON CULEX
QUINQUEFASCIATUS (DIPTERA) AND HELEOBIA CUMINGII (MOLLUSCA)
TOXICIDAD DE AGAVE AMERICANA Y FURCRAEA ANDINA (ASPARAGACEAE) SOBRE
CULEX QUINQUEFASCIATUS (DIPTERA) Y HELEOBIA CUMINGII (MOLLUSCA)
1,2 1 1 1 2 3
José Iannacone , Cindy Cajachagua , Brenda Dueñas , Luis Castillo , Lorena Alvariño & George Argota
Abstract
Key words: Culex - ecotoxicology - Heleobia – toxicity - toxicity assay.
Suggested citation: Iannacone, J, Cajachagua, C, Dueñas, B, Castillo, L, Alvariño, L & Argota, G. 2013. Agave
americana and Furcraea andina (Asparagaceae) on Culex quinquefasciatus (Diptera) and Heleobia cumingii (Mollusca)
Neotropical Helminthology, vol. 7, n°2, jul-dec, pp. 311 - 325.
Toxicity of .
1 Facultad de Ciencias Biológicas. Universidad Ricardo Palma (URP). Santiago de Surco, Lima, Perú.
2 Laboratorio de Ecofisiología Animal (LEFA). Facultad de Ciencias Naturales y Matemática (FCNNM). Universidad Nacional Federico Villarreal (UNFV). El
Agustino, Lima, Perú.
3 Laboratorio Ecotoxicología. Grupo de Estudios Preclínicos. Centro de Toxicología y Biomedicina. (TOXIMED). Universidad de Ciencias Médicas. Santiago
de Cuba, Cuba.
E-mail: joseiannacone@gmail.com
Neotrop. Helminthol., 7(2), 2013
2013 Asociación Peruana de Helmintología e Invertebrados Afines (APHIA)
ISSN: 2218-6425 impreso / ISSN: 1995-1043 on line
Agave americana L. and Furcraea andina Trel. (Asparagaceae), are important species for search
of new pesticide agents. The dipteran Culex quinquefasciatus is common in aquatic environments
of Lima and causes painful stings in people. The gastropod Heleobia cumingii D'Orbigny, 1835
is a native snail found in lotic and lentic aquatic environments of Peru. Thus, the
aim of this study was to evaluate the effect of the insecticide and molluscicide of dry leaves
powder and juice in aqueous of A. americana and F. andina on C. quinquefasciatus and H.
cumingii. The end point was the mortality of the larvae of C. quinquefasciatus and of the snail H.
cumingii. Bark of F. andina showed higher insecticidal effect in relation to other aqueous extracts
in toto and periderm evaluated in both plant species. The extract in toto of A. americana showed a
greater effect molluscicide in relation to the rest of aqueous aqueous extracts of bark and periderm
evaluated in both plant species. Aqueous extracts of dry powder of A. americana and F. andina
had higher insecticides than molluscicidal effects. Instead, the aqueous extracts juice from A.
americana and F. andina showed greater molluscicides effects than insecticides.
(Cochliopidae)
Resumen
Palabras clave: Culex - ecotoxicología - ensayo de toxicidad - Heleobia - toxicidad.
Agave americana L. y Furcraea andina Trel. (Asparagaceae) son especies importantes para la
búsqueda de nuevos agentes plaguicidas. El díptero Culex quinquefasciatus (Say, 1823)
(Culicidae) es muy común en los ambientes acuáticos de Lima y ocasiona picaduras dolorosas en
los pobladores. El molusco gasterópodo Heleobia cumingii D'Orbigny, 1835 (Cochliopidae) es
una especie de caracol dulceacuícola nativa del Perú. El objetivo de este trabajo fue evaluar el
efecto insecticida y molusquicida de las hojas en polvo seco y en jugo, ambos en extracto acuoso
de A. americana y F. andina sobre C. quinquefasciatus y H. cumingii. El punto final de lectura fue
la mortalidad de las larvas de C. quinquefasciatus y del caracol H. cumingii. El jugo de la corteza
de F. andina mostró un mayor efecto insecticida en relación al resto de extractos in toto y
peridermo acuosos evaluados en ambas especies de plantas. El extracto del jugo acuoso in toto de
A. americana mostró un mayor efecto molusquicida en relación al resto de extractos acuosos de
corteza y peridermo acuosos evaluados de ambas especies de plantas. Los extractos acuosos de
A. americana y de F. andina a partir del polvo seco presentaron mayores efectos insecticidas que
molusquicidas. En cambio, los extractos acuosos a partir del jugo de A. americana y de F. andina
presentaron mayores efectos molusquicidas que insecticidas.
Iannaconeet al.
Biopesticides on Culex and Heleobia
acuaticas, y se ha evaluado su sensibilidad a
detergentes y al arseniato de plomo (Iannacone
& Alvariño, 2007; Iannacone et al., 2009). La
fauna parasitaria del género Heleobia ha sido
usada como indicadora de fluctuaciones
ambientales (Merlo & Etchegoin, 2011). En el
Perú, H. cumingii está involucrada en la
transmisión de paragonimiasis (Vivar et al.,
1992).
Los plaguicidas de mayor empleo son los
compuestos orgánicos sintéticos (Ntalli et al.,
2011). Pero estos compuestos de origen químico
pueden afectar la salud humana directa e
indirectamente por disrupción de los sistemas
ecológicos, y provocar resistencia no selectiva a
organismos patógenos (Dubey et al., 2010;
Govindarajan et al., 2011; Kareru et al., 2013).
Una alternativa en los países en desarrollo es
usar plantas que presenten compuestos químicos
secundarios y activos contra las vectores y
plagas, muchos de los cuales no han sido
adecuadamente evaluados como fuente de
sustancias con propiedades insecticidas,
molusquicidas, repelentes, deterrentes de
oviposición y alimentación, y reguladores del
crecimiento (Bakry, 2009a,b; Vijay, 2010;
Culex quinquefasciatus (Say, 1823) (Diptera:
Culicidae) perteneciente al complejo de C.
pipiens, es un zancudo muy común y abundante
en los ambientes acuáticos de Lima. Este
zancudo causa picaduras dolorosas en los
pobladores de la ciudad de Lima y constituye un
importante problema de entomología médica a
nivel mundial (Iannacone & Alvariño, 1996;
Tennyson et al., 2012a,b). Según la OMS
(Organizacn Mundial de la Salud), los
zancudos constituyen “el enemigo público
número uno” y representan una de las mayores
amenazas para la salud pública (Mullai &
Jebanesan, 2007).
Heleobia cumingii D'Orbigny, 1835
(Gastropoda: Cochliopidae) es una especie
nativa que se encuentra distribuida en
Sudamérica y en el Perú en ambientes acuáticos
lóticos y lénticos (Iannacone et al., 2003;
Iannacone & Alvariño, 2007; Cazzaniga, 2011).
Esta especie es importante en las cadenas
tróficas bénticas (Neves et al., 2010), tolera
variaciones de pH, vive asociada a macrofitas
INTRODUCCIÓN
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Neotrop. Helminthol., 7(2), 2013
A la fecha no se tienen resultados toxicológicos
agudos de A. americana y F. andina
(Asparagaceae) sobre C. quinquefasciatus
(Diptera) y H. cumingii (Mollusca).
El objetivo de la presente investigación fue
evaluar la toxicidad de los bioplaguicidas A.
am eri can a y F. and ina so bre C.
quinquefasciatus y H. cumingii.
Las pruebas de toxicidad aguda con F. andina y
A. americana sobre las dos especies biológicas
C. quinquefasciatus y H. cumingii se efectuaron
en el Laboratorio de Cordados, Facultad de
Ciencias Biológicas, Universidad Ricardo
Palma, Distrito de Santiago de Surco, Lima,
Perú, en el 2013.
Para este estudio, se procedió a emplear las hojas
de las plantas F. andina y A. americana. Los
especímenes botánicos se obtuvieron en
diversas localidades de la ciudad de Lima, Perú.
Para la colección botánica se siguieron los
protocolos de campo utilizados por el Jardín
Botánico de Missouri, EEUU (Liesner, 1996).
Las especies botánicas colectadas se llevaron al
Museo de Historia Natural (MHN) “Vera
Alleman Haeghebaert de la Universidad
Ricardo Palma (URP), entidad de referencia
reconocida de la ciudad de Lima, Perú. La
solución madre acuosa de ambas plantas se
preparó mediante dos protocolos: 1) g W seco/L
al 10% (200 g de peso seco de la planta (Cortex,
Peridermo y In toto)/L de agua embotellada
(Cielo®) a partir de la cual se realizaron las
cinco concentraciones a ensayar, las cuales se
aplicaron sobre larva I (L ) y III (L ) de C.
I III
quinquefasciatus a 24 h y 48 h de exposición, y
sobre adultos de H. cumingii a 24h, 48 h, 72 h y
96 h de exposición; 2) mL/L de peridermo al 1 %
(10 ml de jugo de peridermo)/L de agua
embotellada (Cielo®) a partir de la cual se
realizaron las seis concentraciones a ensayar, los
cuales se aplicaron sobre L de C.
III
quinquefasciatus a 24 h, 48 h, 72 h, 96 h y 144 h
de exposición, y sobre adultos de H. cumingii a
24h, 48 h y 72 h de exposición.
Salawu & Odalbo, 2011; Singh et al., 2012;
Raels & Amiri-Besheli, 2013). Así, los
compuestos orgánicos o metabolitos
secundarios derivados de las plantas que son
denominados “botánicos” son una alternativa al
ser considerados ecoquímicos bajo un manejo
sostenible, debido a su naturaleza biodegradable
y efecto colateral mínimo (Isman, 2006; Dubey
et al., 2010; Tiilikkala et al., 2011; Chen et al.,
2012; Tiwari, 2012; Kareru et al., 2013; Rocha et
al., 2013). Estos plaguicidas botánicos son
altamente efectivos y amigables, menos caros
que los sintéticos, disponibles y fácilmente
aplicables en campo con diferentes técnicas
(Mullai & Jebanesan, 2007; Bakry, 2009a; Singh
et al., 2012).
Los insecticidas botánicos son considerados de
bajo riesgo, usados tradicionalmente por las
comunidades humanas, altamente específicos, y
una alternativa atractiva y segura de desarrollo
ambiental a los insecticidas sintéticos para el
control de vectores y plagas (Isman, 2006;
Tennyson et al., 2012a,b; Raels & Amiri-
Besheli, 2013). Varias regiones geográficas en el
ámbito tropical y subtropical presentan vectores
y plagas. En este ámbito se han evaluado los
efectos molusquicidas e insecticidas de
numerosos vegetales (Marston & Hostettmann,
1985; Lima et al., 2002; Ahmed & Rifaat, 2004;
García-Mateos et al., 2004; Ahmed & El-
Hamshary, 2005). En los últimos años, existen
numerosas investigaciones que salan el
interés que se tiene a nivel mundial por las
plantas insecticidas y molusquicidas (Cetin et
al., 2009; Dua et al., 2010; Rocha et al., 2013;
Tiwari, 2012; Tahir et al., 2013).
Furcraea andina Trel. y Agave americana
Linnaeus (Asparagaceae), son plantas con varias
propiedades etnobotánicas, entre la que destaca
los efectos como bioplaguicidas (Pino, 2006).
Las plantas A. americana y F. andina pueden ser
usadas como bioplaguicidas para controlar al
caracol H. cumingii y a las larvas de C.
quinquefasciatus, de difícil manejo por otros
métodos de control. Sin embargo, el uso de
extractos vegetales requiere de una adecuada
evaluación biológica con el fin de garantizar su
empleo en armonía con el desarrollo sostenible.
MATERIALES Y MÈTODOS
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Iannaconeet al.
Biopesticides on Culex and Heleobia
Heleobia cumingii: Se colectaron con la ayuda
de un cucharón de las orillas arenosas-fangosas
y de vegetación sumergida de las lagunas de los
humedales de Pantanos de Villa, Lima, Perú.
Posteriormente fueron trasladados al laboratorio
en recipientes plásticos de 4000 mL, con sustrato
en el fondo. Los caracoles fueron criados en
acuarios de vidrio de 30 × 20 × 20 cm de
capacidad y aclimatados por una semana previa
al bioensayo empleando agua filtrada a 0,54 mm
de abertura procedentes de la laguna de colecta y
agua embotellada por 24 h (1:1 v/v) y
alimentados con Tetramin®, disolviendo 1 g en
60 mL de agua embotellada, se dejó reposar por
5 min, se filtró, y finalmente se repartió 15 mL en
cada envase de 1,5 L (Iannacone & Alvariño,
2002). La crianza de los caracoles se
mantuvieron a una temperatura de 20±2°C °C, a
un pH de 7,0 ± 0,5 y a un fotoperiodo
aproximado de 12:12. El OD presentó una
–1
concentración sobre 6 mg·L . En cada envase de
250 mL de capacidad se procedió a agregar 100
mL de cada una de las concentraciones de las dos
sustancias químicas empleadas y se emplearon
cinco individuos de H. cumingii que se
distribuyeron al azar en cada una de las cuatro
repeticiones. Para la discriminación de la
mortalidad se usó el criterio propuesto por
Iannacone & Alvariño (2002). Se consideró
muerto el individuo incapaz de realizar algún
tipo de movimiento en la placa de recuento,
como mover el pie, la concha ó los tentáculos
cefálicos durante 15 s de observación al
estereoscopio.
Diseño experimental
Para los dos organismos acuáticos destinatarios:
C. quinquefasciatus y H. cumingii, las pruebas
de toxicidad aguda empleando como punto final
la mortalidad se evaluaron en cinco/seis
concentraciones más el control con cuatro
réplicas por concentración conteniendo cinco
individuos por cada unidad experimental. El
control empleado fue agua de dilución a base de
agua embotellada (Cielo®).
Los tratamientos para F. andina y A. americana
para C. quinquefasciatus fueron: 1) Ensayo 1:
2,04 g de Wseco (Cortex, Peridermo y in toto)/L;
5,12 g de Wseco (Cortex, Peridermo y in toto)/L;
Material biológico
El protocolo principal es señalado entre
paréntesis para cada una de las dos especies
acuáticas.
(1) Culex quinquefasciatus “larva de zancudo”-
mortalidad (WHO, 1996; Iannacone & Alvariño,
1996).
(2) Heleobia cumingii “caracol dulceacuícola” -
mortalidad (WHO, 1965; Iannacone et al.,
2009).
Las dos especies de invertebrados colectadas se
llevaron al MHN “Vera Alleman Haeghebaert”
de la URP, entidad de referencia reconocida de la
ciudad de Lima, Perú.
Bioensayos
Se evaluó la toxicidad aguda de las dos plantas
sobre dos organismos acuáticos destinatarios.
Culex quinquefasciatus: La especie se
identificó a nivel larval, pupal y de adulto
(Salazar & Moncada, 2004; Vidal et al., 2011).
Se emplearon pinzas entomológicas y una pipeta
acuática para la colecta de las masas de huevos
de C. quinquefasciatus de las lagunas de los
humedales de Pantanos de Villa, Lima, Perú. En
el laboratorio las masas de huevos se pusieron en
un medio compuesto por 5,0 g de alimento para
perros más 1,0 g de pasto seco homogeneizado
con 1 L de agua embotellada. Las larvas recién
eclosionadas se alimentaron diariamente. La
crianza se mantuvo a 20±2°C y un oxígeno
-1
disuelto (OD) de 6±0,5 mg·L determinado
mediante el método de Winkler, a un pH de 7,5 ±
0,5 y a un fotoperiodo aproximado de 12:12.
Cada experimento en envases de 250 mL se
inició con L dentro de las 24 h de haber
I
eclosionado y con el estadio L de C.
III
quinquefasciatus dentro de las 48 h de haber
mudado. Los ejemplares se seleccionaron al azar
de los frascos de crianza masiva. Cinco L y L se
I III
distribuyeron al azar en cada unidad
experimental para cada concentración en cada
una de las cuatro réplicas. Las larvas no se
alimentaron durante toda la duración del ensayo.
Al realizar las pruebas de toxicidad, L o L se
I III
consideraron muertas si no eran capaces de
moverse coordinadamente al ser pinchadas con
un alfiler.
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Neotrop. Helminthol., 7(2), 2013
La Tabla 1 nos muestra el efecto tóxico agudo del
extracto acuoso a partir del polvo seco (g
Wseco/L) de A. americana y de F. andina sobre
larvas de C. quinquefasciatus de I y III estadio de
desarrollo a 24 h y a 48 h de exposición. Se
observó la siguiente secuencia descendente en la
toxicidad aguda de A. americana sobre C.
quinquefasciatus a 48 h de exposición en base a
la CL : in toto (L ) > peridermo (L ) > in toto
50 1 1
(L ) > cortex (L). En cambio se vio la siguiente
III I
secuencia en orden descendente en la toxicidad
aguda de F. andina sobre C. quinquefasciatus a
48 h de exposición en base a la CL : cortex (L )>
50 I
in toto (L ) > peridermo (L ) > in toto (L ). La
1 1 III
corteza de F. andina mostró un mayor efecto
insecticida en relación al resto de extractos
acuosos evaluados (Tabla 1).
La Tabla 2 nos señala el efecto tóxico agudo del
extracto acuoso a partir del jugo (mL/L) de A.
americana y de F. andina sobre L de C.
III
quinquefasciatus a 24 h hasta 144 h de
exposición. A 144 h de exposición se notó el
mismo efecto en base a la CL de A. americana y
50
de F. andina sobre L de C. quinquefasciatus.
III
La Tabla 3 nos muestra el efecto tóxico agudo del
extracto acuoso a partir del polvo seco (g
Wseco/L) de A. americana y de F. andina sobre
el caracol dulceacuícola H. cumingii a 24 h hasta
96 h de exposición. Se observó la siguiente
secuencia en la toxicidad aguda de A. americana
sobre H. cumingii a 48 h y a 96 h de exposición
en base a la CL : in toto > peridermo > cortex.
50
En cambio se vio la siguiente secuencia en la
toxicidad aguda de F. andina sobre H. cumingii a
48 h de exposición en base a la CL : peridermo >
50
in toto > cortex. La siguiente secuencia en la
toxicidad aguda de F. andina sobre H. cumingii a
96 h de exposición en base a la CL : in toto >
50
peridermo > cortex. El extracto in toto de A.
americana mostró un mayor efecto
molusquicida en relación al resto de extractos
acuosos evaluados (Tabla 3).
La Tabla 4 nos señala el efecto tóxico agudo del
extracto acuoso a partir del jugo (mL/L) de A.
12,8 g de Wseco (Cortex, Peridermo y in toto)/L;
32 g de Wseco (Cortex, Peridermo y in toto)/L y
80 g de Wseco (Cortex, Peridermo y in toto)/L a
24 h y 48 h de exposición para larvas I y III. 2)
Ensayo 2: 0,25 mL de peridermo/L; 0,5 mL de
peridermo/L; 1,00 mL de peridermo/L; 1,5 mL
de peridermo/L; 2 mL de peridermo/L y 3 mL de
peridermo/L a 24 h, 48 h, 72 h, 96 h y 144 h de
exposición para larvas III.
Los tratamientos para F. andina y A. americana
para H. cumingii fueron: 1) Ensayo 1: 5 g de
Wseco (Cortex, Peridermo y in toto)/L; 10 g de
Wseco (Cortex, Peridermo y in toto)/L; 20 g de
Wseco (Cortex, Peridermo y in toto)/L; 40 g de
Wseco (Cortex, Peridermo y in toto)/L y 80 g de
Wseco (Cortex, Peridermo y in toto)/L a 24 h y
48 h de exposición para adultos. 2) Ensayo 2:
0,12 mL de peridermo/L; 0,25 mL de
peridermo/L; 0,50 mL de peridermo/L; 0,75 mL
de peridermo/L y 1 mL de peridermo/L a 24 h, 48
h y 72 h de exposición para adultos.
El factor de dilución fue mayormente de 0,5 para
la obtención de los cinco/seis tratamientos. El
registro de mortalidad fue corregido usando la
fórmula de Abbott cuando la mortalidad del
control fue menor al 20% (Arivoli & Tennyson,
2011). El diseño estadístico fue en bloque
completamente aleatorizado (DBCA): 5/6
tratamientos (concentraciones) x 4 repeticiones.
Todos los ensayos se realizaron por triplicado.
Tratamiento de datos
En todos los casos, la eficacia de los tratamientos
y las repeticiones se evaluaron a través de un
análisis de varianza (ANDEVA) de dos vías con
prueba complementaria de Tukey. Los datos
porcentuales fueron previamente normalizados
(transformación angular de los datos). Las CLs
50
y los límites fiduciales superiores e inferiores al
95% se calcularon usando el programa
computarizado Probit versión 1,5 (Arivoli &
Tennyson, 2011). El modelo de regresión lineal
fue contrastado empleando el estadístico Chi-
cuadrado. Se usó el paquete estadístico SPSS,
versión 21,00 para el cálculo de los estadísticos
descriptivos e inferenciales a un nivel de
significancia de 0,05.
RESULTADOS
315
Iannaconeet al.
Biopesticides on Culex and Heleobia
mayores efectos insecticidas que molusquicidas
(Tablas 1 y 3). En cambio, los extractos acuosos
a partir del jugo de A. americana y de F. andina
presentaron mayores efectos molusquicidas que
insecticidas (Tablas 2 y 4).
americana y de F. andina sobre H. cumingii a 24
h hasta 72 h de exposición. A 72 h de exposición
se notó el mismo efecto en base a la CL de A.
50
americana y de F. andina sobre H. cumingii.
Los extractos acuosos de A. americana y de F.
andina a partir del polvo seco presentaron
Tabla 1. Efecto tóxico agudo de Agave americana y Furcraea andina en g W seco/L sobre la larva I y III de Culex
quinquefasciatus a 24 h, 48 h, 72 h y 96 h de exposición. ND = No determinado.
Agave americana LICortex LIPeridermo LIin toto LIII in toto
Concentración % mortalidad
(g de Wseco/L) 24 h 48 h 24 h 48 h 24 h 48 h 48 h
0 0 0 0 0 0 0 0
2,04 20 0 10,22 61,49 47,35 84,61 10
5,12 35 57,27 40,15 92,30 63,15 96,15 60
12,8 30 71,51 34,16 100 73,68 100 90
32 75 85,76 58,10 100 84,21 100 95
80 80 92,88 94,01 100 94,74 100 100
CL50 (g/L) 14,36 7,24 14,85 1,66 2,49 0,72 4,89
CL50 inferior (g/L) 3,31 ND ND 1,02 1,38 0,08 2,51
CL50 superior (g/L) 82,74 ND ND 2,16 3,72 1,30 8,21
Furcraea andina LICortex LIPeridermo LIin toto LIII in toto
Concentración % mortalidad
(g de Wseco/L) 24 h 48 h 24 h 48 h 24 h 48 h 48 h
0 0 0 0 0 0 0 0
2,04 70,59 93,33 18,59 31,03 5,51 86,11 5,51
5,12 76,47 96,67 70,92 68,65 16,01 97,22 16,01
12,8 88,24 100 82,55 93,73 63,25 100 63,25
32 88,24 100 82,55 100 89,50 100 89,50
80 94,12 100 100 100 94,75 100 94,75
CL50 (g/L) 0,29 0,22 4,18 3,25 10,81 0,71 10,81
CL50 inferior (g/L) 0,02 0,01 0,01 0,18 5,51 0,12 5,51
CL50 superior (g/L) 0,93 0,76 14,71 4,02 17,23 1,19 17,23
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Neotrop. Helminthol., 7(2), 2013
Tabla 2. Efecto tóxico agudo de Agave americana y Furcraea andina en mL/L sobre la larva III de Culex
quinquefasciatus a 24 h, 48 h, 72 h y 96 h de exposición. ND = No determinado.
Agave americana
LIII peridermo
Concentración % mortalidad
(mL/L) 24 h 48 h 72 h 96 h 144 h
0 0 0 0 0 0
0,25 0 5 5 5,66 2,31
0,5 5 5 10 11,21 8,42
1,00 5 10 15 16,76 8,42
1,5 5 10 20 19,53 20,63
2 20 20 20 22,31 26,73
3 25 30 30 27,85 45,05
CL50 (mL/L) 8,96 12,52 11,76 14,79 3,65
CL50 inferior (mL/L) ND 6,45 6,03 5,75 2,78
CL50 superior (mL/L) ND 52,33 49,89 >1000 7,41
Furcraea andina LIII peridermo
Concentración % mortalidad
(mL/L) 24 h 48 h 72 h 96 h 144 h
0 0 0 0 0 0
0,25 5 0,62 5,37 11,03 10,92
0,5 7,5 3,24 10,63 16,59 17,28
1,00 10 11,08 15,89 19,37 23,65
1,5 12,5 13,70 21,14 22,15 26,83
2 15 16,71 21,14 27,71 30,01
3 15 21,55 26,4 33,27 55,46
CL50 (mL/L) >3 11,72 15,74 14,24 3,57
CL50 inferior (mL/L) ND 5,69 6,41 5,24 2,30
CL50 superior (mL/L) ND 253 319 844 8,21
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Iannaconeet al.
Biopesticides on Culex and Heleobia
Tabla 3. Efecto tóxico agudo de Agave americana y Furcraea andina en g W seco/L sobre el caracol Heleobia
cumingii a 24 h, 48h, 72 h y 96 h de exposición. ND = No determinado.
Agave americana Cortex Peridermo in toto
Concentración % mortalidad
(g de Wseco/L) 24 h 48 h 72 h 96 h 24 h 48 h 72 h 96 h 24 h 48 h 72 h 96 h
0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
5 0 0 25 40 10 15 17,5 40 17,5 20 47,5 57,5
10 0 0 45 47,5 0 20 22,5 60 25 27,5 55 82,5
20 0 0 52,5 82,5 0 22,5 27,5 87,5 40 45 77,5 100
40 0 42,5 60 90 27,5 25 52,5 92,5 42,5 87,5 100 100
80 20 67,5 72,5 100 42,5 80 82,5 100 85 100 100 100
CL50 (g/L) >80 54,77 18,77 8,05 137 48,58 30,65 6,88 29,09 15,60 6,85 4,61
CL50 inferior (g/L) ND 36,95 14,08 3,52 ND ND 15,57 5,60 11,83 6,64 1,07 3,71
CL50 superior (g/L) ND 107 24,81 12,48 ND ND 102 8,12 201 31,14 12,13 5,36
Furcraea andina Cortex Peridermo in toto
Concentración % mortalidad
(g de Wseco/L) 24 h 48 h 72 h 96 h 24 h 48 h 72 h 96 h 24 h 48 h 72 h 96 h
0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
5 0 0 0 20 0 0 0 12,5 0 0 15 20
10 0 0 2,5 17,5 17,5 17,5 20 22,5 0 0 12,5 42,5
20 0 5 5 20 17,5 20 37,5 42,5 0 15 22,5 57,5
40 0 0 12,5 42,5 25 42,5 45 60 35 37,5 40 62,5
80 15 17,5 22,5 57,5 40 62,5 62,5 77,5 42,5 65 67,5 85
CL50 (g/L) >80 >80 243 68,89 128 51,62 43,79 27,35 78,26 54,45 51,82 16,86
CL50 inferior (g/L) ND ND 144 28,90 47,22 31,25 23,97 23,02 43,34 47,80 26,62 13,71
CL50 superior (g/L) ND ND 663 >1000 >1000 155 191 33 >1000 63,53 495 20,49
318
Neotrop. Helminthol., 7(2), 2013
Tabla 4. Efecto tóxico agudo de Agave americana y Furcraea andina en mL/L sobre el caracol Heleobia cumingii a
24 h, 48 h, 72 h y 96 h de exposición. ND = No determinado.
Agave americana Peridermo
Concentración % mortalidad
(mL/L) 24 h 48 h 72 h
0 0 0 0
0,12 0 0 0
0,25 20 22,5 25
0,50
12,5
50
55
0,75
40
75
77,5
1
70
92,5 95
CL50 (mL/L)
0,82
0,46 0,43
CL50 inferior (mL/L)
ND
0,42 0,33
CL50 superior (mL/L)
ND 0,50 0,54
Furcraea andina
Peridermo
Concentración % mortalidad
(mL/L)
24 h
48 h 72 h
0
0
0
0
0,12
0
12,5 12,5
0,25
0
0
7,5
0,50 0 22,5 55
0,75 17,5 35 85
1 67,5 79 95
CL50 (mL/L) 0,91 0,83 0,41
CL50 inferior (mL/L) 0,87 ND 0,08
CL50 superior (mL/L) 0,95 ND 1,01
independientemente sobre insectos y moluscos
(Arivoli & Tennyson, 2011; Hammami et al.,
2011).
Actividad molusquicida se ha visto en varias
especies de Asparagaceae (Famsworth et al.,
1987; Debnath et al., 2010). En Agave wightii
Drumm. & Prain in Beng y Agave sisalana
Perrine, se han extraído saponinas esteroides
(Sharma, 1989; Debnath et al., 2010). Acción
molusquicida se ha observado en Agave filifera
Los productos derivados de plantas están
recibiendo una atención en aumento y más de
2000 especies de plantas pertenecientes a 235
familias son conocidas por sus propiedades
plaguicidas (Arivoli & Tennyson, 2011;
Sundararaj, 2012; Lina et al., 2013). Varios
biocompuestos bioactivos, que incluyen
fenoles, terpenoides y alcaloides presentes en las
plantas pueden actuar en conjunto o
DISCUSIÓN
319
Iannaconeet al.
Biopesticides on Culex and Heleobia
extracto acuoso de F. andina serían las
responsable del efecto insecticida en C.
quinquefasciatus.
El extracto in toto de A. americana
(Asparagaceae) mostró un mayor efecto
molusquicida en relación al resto de extractos
acuosos evaluados. El género Agave presenta
varias especies americanas, siendo México el
centro de origen de este género, pero con una
distribución cosmopolita (Almaraz-Abarca et
al., 2013). Pruebas fitoquímicas señalan en el
género Agave, metabolitos secundarios como: 1)
saponinas, 2) glicósidos cardiacos, 3) esteroides,
4) taninos y 5) flavonoides (Hammuel et al.,
2011; Kadam et al., 2012; Rizwan et al., 2012;
Almaraz-Abarca et al., 2013). Las saponinas
esteroidales en Agave muestran concentraciones
bastante altas y son las más investigadas,
presentando una actividad molusquicida bien
documentada (Debnath et al., 2010; Hammuel et
al., 2011; Osman et al., 2011; Almaraz-Abarca et
al., 2013). Se ha demostrado que las saponinas
hecogeninas son las más abundantes en hojas
maduras de Agave (Debnath et al., 2010). Los
extractos del género Agave son considerados un
buen sustituto para el molusquicida
niclosamida, disponible comercialmente, y que
pueden ser empleados en forma segura para el
control de caracoles vectores-transmisores
(Ojewole, 2004; Rizwan et al., 2012).
El tipo de extracto empleado a partir del polvo
seco del cortex, peridermo o in toto o del jugo del
peridermo de A. americana y F. andina
(Asparagaceae) influye en la mortalidad de C.
quinquefasciatus y H. cumingii. Este
comportamiento está bien documentado en la
literatura. Mullai & Jebanesan (2007)
observaron diferencias en la mortalidad de dos
plantas cucurbitáceas sobre C. quinquefasciatus
según el extracto utilizado. Bakry (2009b)
evaluó comparativamente el efecto
molusquicida de diferentes extractos de 10
especies de plantas sobre B. alexandrina
encontrando los mayores efectos en el extracto
etanólico. Tennyson et al. (2012a) encontraron
diferencias en la mortalidad de C.
quinquefasciatus al usar diferentes tipos de
extractos de 25 plantas. Ilahi & Ullah (2013)
(Salm-Dyck) Baker, y Agave lechugilla Torr,
1859 (Shoeb & El-Sayed, 1985). Efecto
molusquicida sobre Biomphalaria havanensis
(L. Pfeiffer, 1839) se ha encontrado en Agave
legrelliana Jacobi. H, Agave fourcroydes Lem. y
Agave beauleriana Jacobi (Ferrer et al.,1993;
Díaz & Ferrer, 1996). El-Eman et al. (1989)
demostraron en A. filifera disminución de la
capacidad de puestas de huevos de
Biomphalaria alexandrina Ehrenberg, 1831.
Extractos acuosos de Agave attenuata Salm-
Dyck, 1834 presentaron actividad contra
Bulinus africanus (Krauss, 1848) (Debnath et
al., 2010). De la misma manera en este estudio,
efectos molusquicidas en H. cumingii se vieron
por A. americana y en F. andina.
La corteza de F. andina mostró un mayor efecto
insecticida en relación al resto de extractos
acuosos (Tabla 1). Los fitoquímicos son una
alternativa y reemplazo a los insecticidas
sintéticos altamente aceptables, por lo que los
efectos de F. andina sobre culícidos son
comparables a diferentes especies de plantas en
diferentes familias bien documentados en la
literatura (Pérez-Pacheco et al., 2004; Nogueiras
et al., 2010; Remia & Logaswamy, 2010; Arivoli
& Tennyson, 2011; Kishore et al., 2011; Ghosh
et al., 2012; Ilahi & Ullah, 2013; Pino et al.,
2013; Tahir et al., 2013). Dharmshaktu et al.
(1987) evaluaron extractos de hojas y de
semillas de A. americana sobre larvas de C.
quinquefasciatus, encontrando un mayor efecto
en los primeros estadios larvarios en
comparación a los avanzados. De los residuos de
la separación de la fibra del sisal de las hojas de
A. sisalana se ha observado efectos larvicidas
sobre C. quinquefasciatus atribuido a las
saponinas (Pizarro et al., 1999). En F. andina se
ha observado actividad molusquicida sobre
Fossaria viatrix (Orbigny, 1935) y Physa
venustula Gould, 1948 (Olano, 1999; Guzmán,
2008). En Furcraea selloa K. Koch., se ha visto
efectos molusquicidas en B. alexandrina
(Osman et al., 2011). Las saponinas de los
extractos etanólicos y acuosos de Furcraea
hexapetala (Jacq.) presentaron actividad
insecticida sobre el pulgón hemiptera Myzus
persicae Sulzer, 1766 (González et al., 2011).
Posiblemente las saponinas de la corteza del
320
Neotrop. Helminthol., 7(2), 2013
Arivoli, S & Tennyson, S. 2011.
Azokou, A, Koné, MW, Koudou, B & Bi, HFT.
2013.
Bakry, FA. 2009a.
Bakry, FA. 2009b.
Cazzaniga, N. 2011.
Cetin, H, Kurt, Y, Isik, K & Yanikoglu, A. 2009.
Chen, YQ, Xu, QM, Liu, YL, Li, XR, Yang, SL
& Zhuge, HX. 2012.
Debnath, M, Pandey, M, Sharma, R, Thakur, GS
& Lal, P. 2010,
Dharmshaktu, NS, Prabhakaran, PK & Menon,
PK. 1987.
Larvicidal and
adult emergence inhibition activity of
Abutilon indicum (Linn.) (Malvaceae)
leaf extracts against vector mosquitoes
(Diptera: Culicidae). Journal of
Biopesticides, vol. 4, pp. 27-35.
Larvicidal potential of some plants
from West Africa against Culex
quinquefasciatus (Say) and Anopheles
gambiae Giles (Diptera: Culicidae).
Journal of Vector Borne Disease, vol. 50,
pp. 103-110.Use of some plant extracts to
control Biomphalaria alexandrina snails
with emphasis on some biological effects.
World Applied Sciences Journal, vol. 6,
pp. 1335-1345.
Use of some plant extracts to
control Biomphalaria alexandrina snails
with emphasis on some biological effects.
Pesticide Biochemistry and Physiology,
vol. 95, pp. 159-165.
Heleobia Stimpson, 1865:
Taxonomía. En: Cazzaniga, NJ (ed.). El
género Heleobia (Caenogastropoda:
Cochliopidae) en América del Sur. Amici
Molluscarum, Número Especial, pp. 12-
16.
Larvicidal effect of Cedrus libani seed oils
o n m o s q u i t o C u l e x p i p i e ns .
Pharmaceutical Biology, vol. 47, pp. 665-
668.
Laboratory
evaluation of the molluscicidal activity of
Pulsatilla chinensis (Bunge) Regel
saponins against the snail Oncomelania
hupensis. Biomedical and Environmental
Sciences, vol, 25, pp. 224-229.
Biotechnological
intervention of Agave sisalana: A unique
fiber yielding plant with medicinal
property. Journal of Medicinal Plants
Research,vol. 4, pp. 177-187.
Laboratory study on the
mosquito larvicidal properties of leaf and
vieron un mayor efecto del extracto metanólico
de las hojas de Artemisia vulgaris Linn. en
comparación a las raíces y al tallo.
Se vio un mayor efecto de de A. americana y F.
andina en L que en L de C. quinquefasciatus.
I III
Dharmshaktu et al. (1987) encontraron un
mayor efecto del extracto de A. americana sobre
L que en L de C. quinquefasciatus. Soni &
I III
Prakash (2012) y Azoku et al. (2013) observaron
mayores efectos larvicidas por biocidas en
estados larvales tempranos que en los avanzados
de culícidos.
Es necesario coordinar esfuerzos locales,
regionales, nacionales y globales para el manejo
y explotación de productos botánicos como un
componente clave e integral de manejo de plagas
y vectores (Sundararaj, 2012). En el Neotrópico,
investigaciones adicionales son necesarias para
elucidar la actividad plaguicida en un amplio
rango de especies de mosquitos y de caracoles y
de los ingredientes activos específicos
responsables de la actividad larvicida y
molusquicida (Tanwer & Vijayvergia, 2010;
Tennyson et al., 2012b; Tahir et al., 2013).
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
Ahmed, AH & Rifaat, MMA. 2004.
Ahmed, AH & El-Hamshary, EM. 2005.
Almaraz-Abarca, N, Delgado-Alvarado, EA,
Ávila-Reyes, JA, Uribe-Soto, JN &
González-Valdez, LS. 2013.
Molluscicidal and cercaricidal efficacy of
Acanthus mollis and its binary and
tertiary combinations with Solanum
nigrum and Iris pseudacorus against
Biomphalaria alexandrina. Journal of the
Egyptian Society of Parasitology, vol. 34,
pp. 1041-1050.
Larvicidal, miracidiacidal and
cercaricidal activities of the Egyptian
plant Iris pseudacorus. Journal of the
Egyptian Society of Parasitology, vol. 35,
pp. 41-48.
The phenols
of the genus Agave (Agavaceae). Journal
of Biomaterials and Nanobiotechnology,
vol. 4, pp. 9-16.
321
Iannaconeet al.
Biopesticides on Culex and Heleobia
Animal & Plant Sciences, vol. 10, pp.
1300-1305.
Ovicidal and repellent activities of
botanical extracts against Culex
quinquefasciatus, Aedes aegypti and
Anopheles stephenensis (Diptera:
Culicidae). Asian Pacific Journal of
Tropical Medicine, vol. 109, pp. 43-48.
Efecto de plantas
molusquicidas sobre Physa venustula
(Gould, 1847) y sobre miracidios de
Fasciola hepatica (Linnaeus, 1758) en el
Perú. Tesis (Dr.). Universidad Nacional
Mayor de San Marcos. Facultad de
Ciencias Biológicas. Escuela de Post-
Grado. Lima, Perú.
Molluscicidal
activity of various solvent extracts from
Solanum nigrum var. vollosum L. aerial
against Galba truncatula. Parasite, vol.
18, pp. 63-70.
Phytochemical and antimicrobial
screening of methanol and aqueous
extracts of Agave sisilana. Acta Poloniae
Pharmaceutica –Drug Research, vol. 68,
pp. 535-539. Tolerancia de
l a l ar v a d el z a nc u do C u l ex
q u i n q u e f a s c i a t u s a m e t a l e s
contaminantes del medio acuático.
Revista peruana de Entomología, vol. 39,
pp. 105-110. Efecto del
detergente doméstico alquil aril sulfonato
de sodio lineal (LAS) sobre la mortalidad
de tres caracoles dulceacuícolas en el
Perú. Ecología Aplicada, vol. 1, pp. 81-
87. Diversidad y
a b u n d a n c i a d e c o m u n i d a d e s
zooplanctónicas litorales del humedal
Pantanos de Villa, Lima, Perú. Gayana,
vol. 71, pp. 49-65.
Macroinvertebrados en las lagunas de
Govindarajan, M, Mathivanan, T, Elumalai, K,
Krishnappa, K & Anandan, A. 2011.
Guzmán, SWA. 2008.
Hammani, H, Mezghani-Jarraya, R & Damak,
M & Ayadi, A. 2011.
Hammuel, C, Yebpella, GG, Shallangwa, GA,
Asabe, M, Magomya, AM & Agbaji, AS.
2011.
Iannacone, J & Alvariño, L. 1996.
Iannacone, J & Alvariño, L. 2002.
Iannacone, J & Alvariño, L. 2007.
Iannacone, J, Mansilla, J & Ventura, K. 2003.
seed extract of the plant Agave americana.
Journal of Tropical Medicine and
Hygiene, vol. 90, pp. 79-82.
Efecto de las dosis
letales de plantas de la familia Agavaceae
sobre sobre la actividad cardiaca y la
oviposición de Biomphalaria havanensis
(Mollusca: Planorbidae). Revista Cubana
de Medicina Tropical, vol. 48, pp. 21-24.
Adulticidal activity of essential oil of
Lantana camara leaves against
mosquitoes. Indian Journal of Medical
Research, vol. 131, pp. 434-439.
Prospects of botanical
pesticides in sustainable agriculture.
Current Science, vol. 98, pp. 479-480.
Agave filifera (Family
Agavaceae) as a molluscicidal agent.
th
Abstract 10 International Malacological
Congress, Tubingen. p. 64.
Plants with potential
molluscicidal activity. In: Mott, KE. (Ed).
Plant molluscicides. New York, Wiley. pp.
131-204.
Estudios de la acción
molusquicida en el laboratorio del
maguey Agave legreliana, sobre
Biomphalaria havanensis. Revista
Cubana de Medicina Tropical, vol. 45, pp.
118-121.
Toxicidad de
alcaloides de Erythrina americana en
l a r v a s d e m o s q u i t o C u l e x
quinquefasciatus. Revista Fitotecnia
Mexicana, vol. 27, pp. 297-303.
Plant extracts as potential mosquito
larvicides. Indian Journal of Medical
Research, vol. 135, pp. 581-598.
Effectiveness of
Furcraea hexapetala (Jacq.) urban extract
on Myzus persicae Zulzer. Journal of
Díaz, R & Ferrer, J. 1996,
Dua, VK, Pandey, AC & Dash, AP. 2010.
Dubey, NK, Shukla, R, Kumar, A, Singh, P &
Prakash, B. 2010.
El-Eman, MA, Shoeb, HA, Mohmed, AM &
Saad, AM. 1989,
Farnsworth, NR, Henderson, TO & Soejarto,
DD. 1987,
Ferrer, J, Sanchez, R, Perera, G, Yong, M &
Sanchez, J. 1993,
García-Mateos, R, Pérez-Pacheco, R,
Rodríguez-Hernández, C & Soto-
Hernández, M. 2004.
Ghosh, A, Chowdhury, N & Chandra, G. 2012.
González, LC, Valero, AF, Meseguer, IO &
León, JOG. 2011.
322
Lima, NMF, Dos Santos, AF, Porfirio, Z,
Goulart, MOF & Sant´Ana, AE. 2002.
Lina, EC, Dadang, Manuwoto, S, Syahbirin, G
& Prijono, D. 2013.
Marston, A & Hostettmann, K. 1985.
Merlo, MJ & Etchegoin, JA. 2011.
Mullai, K & Jebanesan, A. 2007.
Ntalli, NG & Menkissoglu-Spiroudi, U. 2011.
Neves, RAF, Valentin, JL & Figueiredo, GM.
2010.
Nogueiras, C, Spengler, I, Guerra, JO, Ortiz, Y,
Toxicity of Lapachol and Isolapachol and
their potassium salts against
Biomphalaria glabrata, Schistosoma
mansoni cercariae, Artemia salina and
Tilapia nilotica. Acta Tropica, vol. 83, pp.
43-47.
Synergistic action of
mixed extracts of Brucea javanica
(Simaroubaceae), Piper aduncum
(Piperaceae), and Tephrosia vogelii
(Leguminosae) against cabbage head
caterpillar, Crocidolomia pavonana.
Journal of Biopesticides, vol. 6, pp. 77-83.
Review
article number 6: Plant molluscicides.
Phytochemistry, vol. 24, pp. 639-652.
Testing
temporal stability of the larval digenean
community in Heleobia conexa
(Mollusca: Cochliopidae) and its possible
use as an indicator for environmental
fluctuations. Parasitology, vol. 138, pp.
249-256. Larvicidal,
ovicidal and repellent activities of the leaf
extract of two cucurbitaceous plants
against filarial vector Culex
quinquefasciatus (Say) (Diptera:
Culicidae). Tropical Biomedicine, vol.
24, pp. 1-6.
Pesticides of botanical origin: A
promising tool in plant protection. pp. 3-
24. In: Pesticides Formulations, Effects,
Fate. Stoytcheva, M. (Ed.). In Tech,
A v a i l a b l e f r o m :
http://www.intechopen.com/books/pestic
ides-formulations-effects-fate/pesticides-
of-botanical-origin-a-promising-tool-in-
plant-protection leído el 5 junio del 2013.
Morphological description of the
ga st rop od He leo bi a a ust ral is
(Hydrobiidae) from eggs to hatching.
Brazilian Journal of Oceanography, vol.
58, pp. 247-250.
Puerto Viejo, Lima, Pe. Ecología
Aplicada, vol.2, pp. 116-124.
Evaluación del riesgo ambiental del
arseniato de plomo en bioensayos con
ocho organismos no destinatarios.
Journal of the Brazilian Society of
Ecotoxicology, vol. 4, pp. 73-82.
Larvicidal activities of
different parts of Artemisia vulgaris Linn.
against Culex quinquefasciatus Say
(Diptera: Culicidae). International
Journal of Innovation and Applied
Studies, vol. 2, pp. 189-193.
Botanical insecticides,
deterrents, and repellents in modern
agriculture and an increasingly regulated
world. Annual Review of Entomology,
vol. 51, pp. 45-66.
Pharmacognostic and
phytochemical studies on roots of Agave
americana. International Journal of
Pharmacognosy and Phytochemical
Research, vol. 4, pp. 92-96. Use
of botanicals and safer insecticides
designed in controlling insects. The
African case. Chapter 10. pp. 297-309. In:
Insecticides - Development of safer and
more effective technologies. Trdan, S.
(Ed.). InTech. Available from
http://cdn.intechopen.com/pdfs/42222/
InTech-Use_of_botanicals_and_
safer_insecticides_designed_in_controlli
ng_insects_the_african_case.pdf leído el
15 de agosto del 2013.
A review on natural products
with mosquitocidal potentials. In:
Opportunity, Challenge and Scope of
natural products in Medicine Chemistry.
pp. 335-365. Research Signpost. Kerala,
India. Técnicas de campo utilizadas
por el Jardín Botánico de Missouri. En
http://www.mobot.org/mobot/research/li
brary/Fieldtechbook/spanish/tpage.html
leido el 15 de octubre del 2011.
Iannacone, J, Alvariño, L & Paredes, C. 2009.
Ilahi, I & Ullah, F. 2013.
Isman, MB. 2006.
Kadam, PV, Yadav, KN, Deoda, RS,
Narappanawar, NS, Shivatare, RS & Patil,
MJ. 2012.
Kareru, P, Rotich, ZK & Maina, EW. 2013.
Kishore, N, Mishra, BB, Tiwari, VK & Tripathi,
V. 2011.
Liesner, R. 1996.
Neotrop. Helminthol., 7(2), 2013
323
botanical insecticide and two chemical
insecticides on Agonoscena pistaciae
Burckhardt and Lauterer (Hemiptera:
Psyllidae) in laboratory and field
conditions. International Journal of
Agriculture and Crop Sciences, vol. 5, pp.
1074-1079. Larvicidal
efficacy of leaf extract of two botanical
against the mosquito vector Aedes
aegypti (Diptera: Culicidae). Indian
Journal of Natural Products and
Resources, vol. 1, pp. 208-212.
Phytochemical and biological studies of
Agave attenuata. International Journal of
Molecular Sciences, vol. 13, pp. 6440-
6451.
Estudo do efeito
moluscicida de espécies vegetais em
embrioes e caramujos adultos de
Biomphalaria glabrata Say, 1818
(Gastropoda, Planorbidae). Revista
Patologia Tropical, vol. 42, pp. 230-239.
The
molluscicidal effects of Hyptis suaveolens
on different stages of Bulinus globosus in
the laboratory. African Journal of
Biotechnology, vol. 50, pp. 10214-10247.
Ciclo de vida
de Culex quinquefasciatus Say, 1826
(Diptera: Culicidae) bajo condiciones no
controladas en Bogotá. Biomédica, vol.
24, pp. 385-392.Steriodal sapogenins of
Agave wightii Dr. and Prain: a systematic
study in vivo and in vitro. Phitol Research,
vol. 2, pp. 151-154. The
molluscicidal properties of Agavaceae
Agave filifera and Agave lophantha
(Egypt). Egyptian Journal of Veterinary
Science, vol. 22, pp. 73-80.
Toxicity of Bauhinia variegata and
Mimusops elengi with plant molluscicides
against Lymnaea acuminata, vol. 2, pp.
Remia, KM & Logaswamy, S. 2010.
Rizwan, K, Zubair, M, Rasool, N, Rìaz, M, Zia-
Ul -Haq , M & Feo , V. 201 2.
Rocha, TJM, Nascimento, FBP, Noé, BDR,
Veiga, JCP, Costa, GN, Aragao, MB &
Santos, AF. 2013.
Salawu, OT & Odalbo, AB. 2011.
Salazar, MJ & Moncada, LI. 2004.
Sharma, OP. 1989.
Shoeb, HA & El-Sayed, MM. 1985.
Singh, LK, Singh, DK & Singh, VK. 2012.
Torres, S, García, TH, Romeu, CR,
Regalado, EL, González, TA, Perera, WH
& Lacret, R. 2010.
Ojewole, JAO. 2004.
Olano, S. 1999.
Osman, GY, Mohamed, AM, Kader, AA &
Mohamed, AA. 2011.
Pérez-Pacheco, R, Rodríguez-Hernández, C,
Lara-Reyna, J, Montes, BR & Ramirez,
VG. 2004.
Pino, G. I. 2006,
Pino, O, Sánchez, Y & Rojas, MM. 2013.
Pizarro, AP, Oliveira, Filho, AM, Parente, JP,
Melo, MT, dos Santos, CE & Lima, PR.
1999.
Raels, AMK & Amiri-Besheli, B. 2013.
Contribution to the
phytochemical study and biological
activity of plants of Cuban flora.
Biotecnología Aplicada, vol. 27, pp. 314-
318. Indigenous plants and
schistosomiasis control in South Africa.
Molluscicidal activity of some Zulu
m e d i c i n a l p l a n t s . B o l e t í n
Latinoamericano y del Caribe de Plantas
Medicinales y Aromáticas, vol. 3, pp. 8-
22. Acción molusquicida de
Furcraea andina Trel. (Agavaceae) sobre
Fossaria viatrix y sus componentes
fitoquímicos. Tesis para optar el título
profesional de Biólogo. 86 p.
Biological studies
on Biomphalaria alexandrina snails
treated with Furcraea selloa marginata
plant (Family: Agavaceae) and Bacillus
thurigiensis kurstaki (Dipel-2x). Journal
of Applied Pharmaceutical science, vol. 1,
pp. 47-55.
Toxicidad de aceites, esencias
y extractos vegetales en larvas de
mosquito Culex quinquefasciatus Say
(Diptera: Culicidae). Acta Zoológica
Mexicana, vol. 20, pp. 141-152.
Estado actual de las Suculentas
en el Perú. Zonas Áridas, vol. 10, pp. 155-
173. Plant
secondary metabolites as alternatives in
pest management. II: An overview of their
potential in Cuba. Revista de Protección
Vegetal, vol. 28, pp. 95-108.
Utilization of the waste of sisal
industry in the control of mosquito larvae.
Revista da Sociedade Brasileira de
Medicina Tropical, vol. 32, pp. 23-29.
Comparison of the toxicity of three
Iannaconeet al.
Biopesticides on Culex and Heleobia
324
Tiwari, F. 2012.
Vidal, PO, Peruzin, MC & Suesdek, L. 2011.
Vijay, P. 2010.
Vivar, R, Pachas, L & Huamán, P. 1992.
WHO (World Health Organization). 1965.
WHO (World Health Organization). 1996.
Molluscicidal properties of
some common medicinal plants against
the vector snails Indoplanorbis exustus.
Stem Cell, vol. 4, pp. 1-3.
Wing diagnostic characters for Culex
quinquefasciatus and Culex nigripalpus
(Diptera: Culicidae). Revista Brasileira
de Entomología, vol. 55, pp. 134-137.
Evaluation of molluscicidal
activity of some Indian medicinal plants
a g a i n s t Ly m n ae a a cu m in a t a.
International Journal of Applied Biology
and Pharmaceutical Technology, vol. 1,
pp. 308-311.
Actualización sistemática de Heleobia
cumingii (Orbygny, 1835) (Gastropoda:
Hydrobiidae), hospedero potencial de
Paragonimus en el Perú. Revista peruana
de medicina Tropical, vol. 6, pp. 105-106.
Molluscicide screening and evaluation.
Bulletin of the World Health
Organization, vol. 33, pp. 567-581.
Report of the WHO informal consultation
on the evaluation and testing of
insecticide. CTD/ WHOPES/IC96. I.
Control of Tropical Diseases Division.
Geneva, WHO.
B76-B82. Larvicidal effect of
Verticillium lecanii metabolites on Culex
quinquefasciatus and Aedes aegypti
larvae. Asian Pacific Journal of Tropical
Diseases, vol. 2, pp. 220-224.
Potential of botanical for
the management of forest insect pests of
India, an overview. Journal of
biopesticide, vol. 5, pp. 44-50.
Potential use of
Calotropis procera (Milk Weed) to control
Culex quinquefasciatus (Diptera:
Culicidae). Pakistan Journal of Zoology,
vol. 45, pp. 615-621.
Phytochemical evaluation and
molluscicidal activity of Andrographis
paniculata. Herba Polonica, vol. 56, pp.
71-77.
Screening of twenty five plant extracts for
larvicidal activity against Culex
quinquefasciatus Say (Diptera:
Culicidae). Asian Pacific Journal of
Tropical Biomedicine, vol. 2, pp. S1130-
S1134.
Bioefficacy of botanical insecticides
against the dengue and chikungunya
vector Aedes aegypti (L.) (Diptera:
Culicidae). Asian Pacific Journal of
Tropical Biomedicine, vol. 2, pp. S1842-
S1844.
Use of botanical
pesticides in modern plant protection.
Chapter 12. Pesticides in the Modern
World- Pesticides uses and management.
Stoytcheva, M. (Ed.). Intech, Available
f r o m :
http://www.intechopen.com/books/pestic
ides-in-the-modern-world-pesticides-
uses-and-management/Use-of-botanical-
pesticides-in-modern-plant-protection
leído el 10 de julio del 2013.
Soni, N & Prakash, S. 2012.
Sundararaj, R. 2012.
Tahir, HM, Ishaq, T, Mukhtar, MK, Khan, SY &
Ahmed, K. 2013.
Tanwer, BG & Vijayvergia, R. 2010.
Tennyson, S, Ravindran, KJ & Arivoli, S. 2012a.
Tennyson, S, Ravindran, KJ & Arivoli, S. 2012b.
Tiilikkala, K, Lindqvist, I, Hagner, M, Setala, H
& Perdikis, D. 2011.
Received August 15, 2013.
Accepted October 12, 2013.
Neotrop. Helminthol., 7(2), 2013
325
Correspondence to author/ Autor para
correspondencia:
José Iannacone
Laboratorio de Ecofisiología Animal (LEFA).
Facultad de Ciencias Naturales y Matemática
(FCNNM). Universidad Nacional Federico
Villarreal (UNFV). El Agustino, Lima, Perú.
E-mail / Correo electrónico:
joseiannacone@gmail.com