Neotrop. Helminthol., 8(1), 2014

2014 Asociación Peruana de Helmintología e Invertebrados Afines (APHIA)

ISSN: 2218-6425 impreso / ISSN: 1995-1043 on line

ORIGINAL ARTICLE / ARTÍCULO ORIGINAL

HELMINTH FAUNA OF PEPRILUS SNYDERI GILBERT & STARKS, 1904 (STROMATEIDAE)

OF CHORRILLOS FISHMARKET, LIMA, PERÚ

HELMINTOFAUNA DE PEPRILUS SNYDERI GILBERT & STARKS, 1904 (STROMATEIDAE)

DEL TERMINAL PESQUERO DE CHORRILLOS, LIMA, PERÚ

1 1,2

Luis Ñacari & Lidia Sánchez

Abstract

With the aim of know the Helminth fauna of Peprilus snyderi (Gilbert & Starks, 1904)

(Stromateidae), a demersal fish carnivore in the central coast of Peru, were examined 214 samples

of P. snyderi from the Chorrillos Fishmarket, collected during the months of February 2011 to

February 2012. We found nine species of helminths. Monogenea: Oaxacotyle oaxacensis,

Digenea: Lecithocladium cristatum, Opechona pharyngodactyla, Lepidapedon sp1,

Lepidapedon sp2 and Lepidapedon sp3, Nematoda: Hysterothylacium sp (Larvae), Anisakis sp.

(Larvae L3) and Rusguniella sp. (Larvae). Opechona pharyngodactyla, Lepidapedon sp1,

Lepidapedon sp2, Lepidapedon sp3 and Rusguniella sp. (Larva) are new records for Peru.

Keywords: Helminth - Lecithocladium - Lepidapedon - Oaxacotyle - Peprilus.

Resumen

Palabras clave: Helmintos - Lecithocladium - Lepidapedon - Oaxacotyle - Peprilus.

Con el objetivo de conocer la helmintofauna de Peprilus snyderi (Gilbert & Starks, 1904)

(Stromateidae), pez demersal carnívoro de la costa central de Perú, fueron examinados 214

ejemplares de P. snyderi, procedente de embarcaciones artesanales del Terminal Pesquero de

Chorrillos, colectados durante los meses de febrero del 2011 a febrero del 2012. Se encontraron

nueve especies de helmintos: el monogeneo Oaxacotyle oaxacensis; los digeneos

Lecithocladium cristatum, Opechona pharyngodactyla, Lepidapedon sp1, Lepidapedon sp2 y

Lepidapedon sp3; los nemátodos Hysterothylacium sp (Larva), Anisakis sp. (Larva L3) y

Rusguniella sp. (Larva). De los cuales O. pharyngodactyla, Lepidapedon sp1, Lepidapedon sp2,

Lepidapedon sp3 y Rusguniella sp. (Larva) son nuevos registros para el Perú.

Suggested citation: Ñacari, L & Sánchez, L. 2014. Helminth fauna of Peprilus snyderi Gilbert & Starks, 1904 (Stromateidae) of

Chorrillos fishmarket, Lima, Peru. Neotropical Helminthology, vol. 8, n°1, jan-jun, pp. 1 - 17.

1 Departamento de Protozoología, Helmintología e Invertebrados Afines, Museo de Historia Natural, Universidad Nacional Mayor de San Marcos. Lima, Perú.

E-mail: bh_luis@hotmail.com. Av. Arenales 1256, Jesús María.

2 Laboratorio de Zoología de Invertebrados. Facultad de Ciencias Biológicas UNMSM. E-mail: lsanchezp@unmsm.edu.pe. Av. Venezuela Cdra. 32 s/n. Lima.

INTRODUCCIÓN

MATERIALES Y MÉTODOS

RESULTADOS

Ñacari & Sánchez

Helminth fauna of Peprilus snyderi

La ictiofauna constituye un recurso alimentario

muy importante, siendo fuente proteica

accesible por medio de las explotaciones

directas de las poblaciones naturales. El estudio

de agentes causantes de patologías en los peces

que está teniendo mucha importancia en virtud a

la expansión mundial de la piscicultura, pues

estos pueden provocar elevadas tasas de

mortandad, reducción de capturas o disminución

del valor comercial de los ejemplares atacados

(Eiras, 1994).

Peprilus snyderi (Gilbert & Starks, 1904)

“pampanito, palometa, gallinazo”, pertenece a la

Familia Stromateidae, que está distribuido desde

del Golfo de California hasta el Norte del Perú

(Chirichigno & Vélez, 1998, Chirichigno &

Cornejo, 2001) y San Juan de Marcona según el

Crucero Bic José Olaya Balandra de IMARPE,

2010. Es un pez demersal, carnívoro, generalista

y eurífago, que se alimenta preferentemente de

invertebrados de importancia en el ensamblaje

de las comunidades litorales marinas (Fischer,

1995).

En los últimos años se ha determinado la fauna

parasitaria para algunas especies ícticas de la

costa central peruana (Oliva & Luque, 1998;

Iannacone, 2003, 2004; Iannacone & Alvariño,

2008, 2009, 2011; Iannacone, et al., 2010, 2011,

2012). En el continente americano algunos

trabajos describen y registran helmintos

parásitos para el género Peprilus en Canadá

(McDonald & Margolis, 1995), en México

(Palm & Overstreet, 2000; Felder & Camp,

2009), en Brasil (Wallet & Kohn, 1987; Azevedo

et al., 2007) y en Perú (Iannacone & Alvariño,

2008). Sin embargo no se han descrito y

registrado ningún parásito para P. snyderi.

El presente estudio tiene como objetivo conocer

la helmintofauna de P. snyderi proveniente de

Chorrillos, Lima, Perú.

Adquirimos 214 ejemplares de P. snyderi en el

periodo de febrero 2011 a febrero 2012. Los

peces fueron obtenidos de la pesca artesanal del

Muelle de Chorrillos, ubicado en 12º 10´S y 77º

02 W, Lima, Perú. Los peces se identificaron con

ayuda de la clave de Chirichigno & Vélez

(1998). En el laboratorio los peces fueron

pesados, medidos y sexados. Examinamos a P.

snyderi para la búsqueda de parásitos en la piel,

aletas, fosas nasales, cavidad bucal, estómago,

intestino, hígado, riñón, corazón, mesenterio y la

cavidad celómica empleando la ayuda de un

microscopio estereoscopio. Los diferentes

grupos de parásitos se fijaron, preservaron y

montaron según las recomendaciones de Eiras et

al. (2006). Para realizar las comparaciones se

midieron con un ocular micrométrico calibrado,

dándose las medidas en milímetros (mm).

Fueron dibujadas con la ayuda de una cámara

lúcida. Carl Zeiss Jena. Determinamos la

prevalencia, intensidad media y abundancia

media por pez para todos los parásitos hallados

deacuerdo con Margolis et al. (1982).

Los especímenes representativos de las especies

de parásitos determinados fueron depositados en

la Colección Helmintológica y de Invertebrados

Relacionados del Museo de Historia Natural de

la Universidad Mayor de San Marcos, Lima,

Perú (MUSM).

Para la identificación y diagnóstico de los

monogeneos y digeneos se utilizó las claves de

Yamaguti (1940), Gibson et al. (2002) y Jones et

al. (2005); para los nemátodos las claves de

Moravec (1998) y Anderson et al. (2009),

además de bibliografía especializada.

Fueron encontradas nueve especies de helmintos

parásitos en P. snyderi.

Familia: Chauhaneidae Lebedev, 1972

Oaxacotyle oaxacensis (Caballero & Bravo,

1963) Lebedev, 1984 (Figura 1, Tabla 1)

Sitio de infección: Branquias.

Depositado: MUSM 3101.

Prevalencia de infección: 88,45 %.

Neotrop. Helminthol., 8(1), 2014

caracteriza por presentar un cuerpo largo y

curvado en zig – zag; fila de cuatro ventosas

pequeñas y otra fila de cuatro grandes en el

opistohaptor y tres pares de ganchos larvales

(Caballero & Hollis, 1963). El monogeneo

encontrado en P. snyderi coincide con las

características del género Oaxacotyle que tiene

como única especie a O. oaxacensis.

Familia Hemiuridae Looss, 1899

Subfamilia Elytrophallinae Skryabin et

Gushanskaya, 1954

Intensidad media: 8,77.

Abundancia media: 7,58.

Comentario:

Oaxacotyle oaxacensis fue descrita por primera

vez por Caballero & Hollis (1963), para

Palometa media [= Peprilus medius (Peters,

1869)] de la región de Oxaca, México, con el

nombre de Pseudomazocraes oaxacensis.

Posteriormente Levedev (1984) creó el género

Oaxacotyle cambiándolo a O. oaxacensis como

única especie del grupo. El género Oaxacotyle se

Figura 1. Oaxacotyle oaxacensis. Escala 0,5 mm. Figura 2. Lecithocladium cristatum. Escala 0,5 mm.

Ñacari & Sánchez

Helminth fauna of Peprilus snyderi

Tabla 1. Datos comparativos en la morfometría de Oaxacotyle oaxacensis (Caballero & Bravo, 1986) Lebedev,

1984. (Medidas en mm).

Parámetro

Caballero & Bravo, 1986

Presente estudio

(n=10)

3,495 – 6,105

2,842 – 5,194

Tamaño

0,810

0,392 – 1,344

0,033 – 0,045

0,036 – 0,063

Faringe

0,033 – 0,041

0,033 – 0,059

0,213 – 0,361

0,083 – 0,182

Esófago

0,033 – 0,037

0,023 – 0,036

0,080 – 0,107

0,083 – 0,149

Órgano copulador

0,037 – 0,049

0,033 – 0,083

0,061 – 0,107

0,073 – 0,109

Vagina

0,020 – 0,029

0,026 – 0,056

Ovario

0,525 – 0,630

Grande

0,075 – 0,090

0,083 – 0,129

Prohaptor

0,097 – 0,105

0,072 – 0,165

0,033 – 0,037

0,033 – 0,053

Ventosas

0,041 – 0,045

0,033 – 0,076

0,810 – 1,245

0,630 – 0,882

Opistohaptor

0,525 – 0,600

0,350 – 0,644

0,150 – 0,160

0,139 – 0,172Ventosa mayor

(1)

0,165 – 0,187

0,116 – 0,221

0,122 – 0,165

Ventosa (2)

0,106 – 0,215

0,124 – 0,165

Ventosa (3)

0,106 – 0,208

0,120 – 0,135

0,116 – 0,162

Derecha

Ventosa menor

(4)

0,132 – 0,150

0,119 – 0,208

0,075 – 0,078

0,066 – 0,076Ventosa mayor

(1)

0,060 – 0,084

0,076 – 0,089

0,063 – 0,079

Ventosa (2)

0,076 – 0,092

0,063 – 0,076

Ventosa (3)

0,063 – 0,092

0,072 – 0,075

0,063 – 0,069

Izquierda

Ventosa menor

(4)

0,072 – 0,076

0,066 – 0,086

Lengüeta

0,165 – 0,330

0,102 – 0,300

0,057

0,050 – 0,066

1 par

0,029

0,020 – 0,036

0,025

0,016 – 0,030

2 par

A 0,008 – 0,010 0,010 – 0,013

L 0,025 0,017 – 0,023

3 par A 0,002 0,002

L 0,106 – 0,205

Huevo A-0,033 – 0,089

Hospedero Palometa media (Peter, 1989) Peprilus snyderi

Distribución Salina Cruz, Oaxaca, México Chorrillos

L=largo; A=ancho

Neotrop. Helminthol., 8(1), 2014

Tabla 2. Datos comparativos en la morfometría de especies de Lecithocladium (medidas en mm).

L. chaetodipteri

L. seriolellae

L. angustiovum

L. morotonense

L. chingi

L. invasor

L. cristatum

Presente

estudio (n=10)

1590 – 2090

1,575 – 2,121

1,286 - 2,225

3,150 - 5,494

1,680 - 6,368

2,060 – 3,570

2,198 –

4,088

Cuerpo

0,540 – 0,670

0,339 – 0,547

0,503 - 0,992

0,752 - 1,008

0,410 – 0,910

0,471 – 0,710

Ecsoma

0,231 – 0,385

0,412 - 0,683

0,436 - 2,345

0,800 - 1,680

1,375 – 1,790

0,812 – 1,652

0,220 – 0,350

0,074 - 0,117

0,241 - 0,369

0,252 - 0,372

0,180 – 0,360

0,182 – 0,267

Ventosa oral

0,285 – 0,326

0,175 – 0,207

0,078 - 0,122

0,221 - 0,315

0,321 - 0,417

0,140 – 0,370

0,181 – 0,257

0,244 – 0,261

0,109 - 0,172 0,281 - 0,375 0,392 - 0,578 0,210 – 0,430

0,210 – 0,353Ventosa

ventral

0,301 – 0,326

0,205 – 0,269

0,205 – 0,269 0,122 - 0,187 0,255 - 0,375 0,424 - 5,97 0,160 – 0,410

0,224 – 0,356

Radio VO/VV

1:1,15 – 1,32

1:1,15 – 1,32 1:1,53 - 1,67 1:1,0 - 1,3 1:1,44 - 1,82 1:1,09 – 1:1,34

0,118 – 0,133

0,118 – 0,133 0,045 - 0,068 0,168 - 0,288 0,212 - 0,282 0,1225 – 0,240

0,115 – 0,191

Faringe

0,065 – 0,087

0,065 – 0,087 0,045 - 0,065 0,134 - 0,201 0,199 - 0,218 0,065 – 0,170

0,070 – 0,129

0,071 - 0,100 0,101 - 0,255 0,199 - 0,392 0,100 – 0,165

Testículo 1

0,073 - 0,090 0,141 - 0,235 0,135 - 0,308 0,100 – 0,158

0,073 - 0,109 0,110 – 0,210

0,100 – 0,158

Testículo 2

0,070 - 0,090 0,090 – 0,180

0,100 – 0,181

0,436 - 0,616 0,738 - 0,828 0,400 – 0,450

0,420 – 0,594Saco del

cirro

0,034 - 0,088 0,038 – 0,040

0,0198 – 0,0231

Atrio genital

0,064 - 0,096 0,100 – 0,120

0,167 – 0,342

0,167 – 0,342 0,103 - 0,187 0,215 - 0,369 0,257 - 0,417 0,170 – 0,550

0,224 – 0,574Vesicula

seminal

0,095 – 0,190

0,095 – 0,190 0,027 - 0,045 0,109 - 0,154 0,148 - 0,212 0,080 – 0,180

0,135 – 0,252

0,052 - 0,090 0,067 - 0,201 0,141 - 0,315 0,070 – 0,190

0,072 – 0,158

Ovario

0,064 - 0,107 0,121 - 0,255 0,180 - 0,315 0,060 – 0,150

0,098 – 0,210

18–20

19 – 22

19 – 22 19 - 24 14 - 18 16 - 19 12,5 – 17,5 15,18 – 19,8

Huevos (µm)

10 – 14

10 – 14 9 - 10 8 - 11 8 - 10 7,5 – 12,5 8,5 – 10,5

Referencia

Amato (1983)

Manter (1954)

Yamaguti (1953) Bray & Cribb

(2004)

Manter &

Pritchard (1960)

Chambers et al.

(2001)

Guagliardo et al.

(2010)

Hospedero

Chaetodipterus

faber

Seriorella brama

Alepes apercna Lutjanus russelli Acanthurus mata

Naso annulatus,

N. tuberosus Seriolella Porosa

Peprilus snyderi

Sitio de

infección

Estómago

Estómago Estómago Estómago

Nódulos en el

esófago

Estómago Estómago

Lugar

Brasil

Nueva

Zelanda

Indonesia Australia

Hawaii

Australia

Argentina

Perú-Chorrillos

L=largo; A=ancho

Bray & Cribb (2004) para Lutjanus russelli

Bleeker, 1849, difiere por su tamaño corporal

que es menor e igual a 2,2 x 0,4 mm, por el

tamaño de la vesícula seminal que es más

pequeña y delgada menor e igual a 0,187 x 045

mm y los huevos que son ligeramente más

grandes (19 – 24 x 9 – 10) µm. L. invasor

reportado en Australia por Chambers et al.

(2001) para Naso annulatus Quoy & Gaimard,

1825 y N. tuberosus Lacepède, 1801, difiere por

su tamaño corporal que es mayor e igual a 6,0 x

1,0 mm, la vesícula seminal que es pequeña,

ubicada parcialmente en la parte dorsal y entre

los testículos, los pares prostáticos son muy

largos, el útero no ingresa al ecsoma y las

vitelógenas ubicadas casi cerca a la tercera parte

posterior del soma. L. chaetodipteri reportado en

Brasil por Amato (1983) para Chaetodipterus

faber Broussonet, 1782, difiere por la longitud

del saco del cirro y las vitelógenas no ingresan

hacia el ecsoma. L. seriolellae reportado en

Nueva Zelanda por Manter (1954) para

Seriorella brama Günther, 1860, difiere por ser

de tamaño pequeño y el saco del cirro comienza

anteriormente a la ventosa ventral. L. cristatum

reportado en Falkland por Gibson (1976) para

Stromateus stellatus Cuvier, 1829, en Perú por

Luque & Oliva (1993) para Seriorella violocea

Guichenot, 1848, en la Antártida por

Zdzitowiecki & Wägele (1997) para Seriorella

sp y en Argentina por Guagliardo et al. (2010)

para Seriorella porosa Guichenot, 1848, tienen

mucha similaridad con la especie en estudio; sin

embargo las medidas reportadas por Guagliardo

et al. (2010) fueron más completas lo cual

permitió una mejor confirmación de la especie,

siendo la longitud del saco del cirro que alcanza

exactamente al nivel de la ventosa ventral y la

relación de radio de las ventosas las

características que permiten identificar esta

especie.

Familia Lepocreadiidae Odhner, 1905

Subfamilia: Lepidapedinae Yamaguti, 1958.

Lepidapedon sp1 (Figura 3)

Sitio de infección: Intestino.

Depositado: MUSM 3105.

Prevalencia de infección: 9,35 %.

Intensidad media: 1,55.

Lecithocladium cristatum (Rudolphi, 1819)

Looss, 1907 (Figura 2, Tabla 2)

Sitio de infección: Estómago e intestino.

Depositado: MUSM 3102.

Prevalencia de infección: 92,52 %.

Intensidad media: 39,4.

Abundancia media: 36,49.

Comentario

Lecithocladium Lühe, 1901 es uno de los

géneros de digeneos con un mayor número de

especies, existen al menos 83 especies como es

mencionado por Bray & Cribb (2004) o pueden

ser más siendo considerados, la mayoría como

sinonimias según Gibson et al. (2002). Se

caracteriza por presentar un cuerpo con fuertes

plegamientos; una ventosa ventral infundibular

debajo de la faringe; vesícula seminal con una

pared muscular gruesa localizada cerca de la

mitad del cuerpo; saco del cirro tubular, angosto

y no alcanza a la posición de la vesícula seminal;

presencia de pares prostáticos y vitelógena

tubular compuesto de siete folículos alargados.

(Gibson et al., 2002). Este género contiene un

gran número de especies descritas en varias

partes del mundo parasitando peces de las

familias Acanthuridae, Carangidae,

Centrolophidae, Ephippidae, Lutjanidae,

Scombridae, Sparidae y Stromateidae.

Nuestro espécimen posee una ventosa ventral

más grande que la ventosa oral, siendo esta la

característica para hacer la comparación con

nueve especies. L. chingi reportado en Hawaii

por Manter & Pritchard (1960) para Acanthurus

mata Cuvier, 1829, difiere por el tamaño

corporal, siendo mayor e igual a 5 x 0,9 mm, la

vesícula seminal es bien pequeña en

comparación al tamaño de su cuerpo. L.

angustiovum reportado en Indonesia por

Yamaguti (1953) para Alepes apercna Grant,

1987, en Philippines por Velásquez (1962) para

Scomber australasicus Cuvier, 1832 y en

Australia por Bray & Cribb (2004) para

Rastrelliger kanagurta (Curier, 1816); estas

difieren por el tamaño de su vesícula seminal que

es mayor e igual a 2,8 x 0,12 mm y los huevos

son ligeramente más delgados. L. moretonense

Bray & Cribb, 2004 reportado en Australia por

Ñacari & Sánchez

Helminth fauna of Peprilus snyderi

Neotrop. Helminthol., 8(1), 2014

Figura 3. Lepidapedon sp1. Escala 0,5 mm. Figura 4. Lepidapedon sp2. Escala 0,5 mm.

Abundancia media: 0,1168.

Comentario

El género Lepidapedon descrita por primera vez

por Stafford (1904), se caracteriza por tener un

robusto conducto masculino interno; ovarios

separados de la ventosa ventral; divertículos no

musculares asociados con metratermo; útero

pre-ovárico, vesícula excretoria alcanza hasta

mitad del cuerpo (Bray & Gibson, 1990).

Las especies de este genéro fueron divididas por

grupos. El primero Grupo Elongatum (las

vitelógenas no alcanzan la ventosa ventral), el

segundo Grupo Rachion (las vitelógenas

alcanzan cercanamente al nivel de la ventosa

Abundancia media: 0,1449.

Lepidapedon sp2 (Figura 4)

Sitio de infección: Intestino posterior.

Depositado: MUSM 3106.

Prevalencia de infección: 1,87 %.

Intensidad media: 3,25.

Abundancia media: 0,0607.

Lepidapedon sp3 (Figura 5)

Sitio de infección: Intestino posterior.

Depositado: MUSM 3107.

Prevalencia de infección: 1,87 %.

Intensidad media: 6,23.

Ñacari & Sánchez

Helminth fauna of Peprilus snyderi

Parámetro O. autobacillaris

O. bacillaris

O. alaskensis

O. occidentalis

O. pharyngodactyla

Presente estudio

(n=5)

3,275–6,312

2,130 – 2,510

1,800 – 3,500

5,790 – 8,410

1,714 – 2,903

1,526 –

2,604

Cuerpo A

341–522

0,260 – 0,310

0,340 – 0,440

0,397 – 0,487

0,210 –

0,462

264–374

0,100

0,082

0,260 – 0,330

0,0726 –

0,1353

V.O. A

245–361

0,090

0,092

0,280 – 0,380

0,102 – 0,126

0,0891 –

0,1386

Prefaringe L

39–238

0,110 – 0,200

0,260 – 0,360

0,034 – 0,300

0,112 –

0,294

90–142

0,100 – 0,130

0,136 – 0,153

0,0792 –

0,1056

Faringe A

97–147

0,080 – 0,140

0,068 – 0,093

0,070 –

0,1056

Esófago L

33–109

0,0196 –

0,0951

Pseudoesófago L

535–874

139–227

0,117

0,0924 –

0,140

V.V. A

147–216

0,100

0,112

0,140 – 0,190

0,146 – 0,187

0,0924 –

0,140

Radio 1 : 0.50–0.72

1: 1,17 – 1,47.

Saco del cirro L

309–567

0,430 – 0,730

Vesícula seminal externa L

100–319

129–219

0,062 –

0,1518

Ovario A

119–222

0,046 –

0,165

180–367

0,210

0,100 –

0,1716

Testíc ulo 1 A

135–258

0,159

0,084 –

0,1551

207–406

0,230

0,110 –

0,112

Testículo 2 A

142–258

0,159

0,084 –

0,126

70–89

67 – 78

70 – 94

57 – 75

60 – 68

66 –

72,6

Huevos (µm) A

35–54

42 – 52

40 – 53

30 – 39

34 – 54

49 –

59,4

País Australia Brasil Alaska USA Colombia Perú, Chorrillos

Hospedero Pomatomus saltatrix Peprilus paru Toadfish Sebastodes atrovirens Trachinotus rhodopus Peprilus snyderi

Sitio de infección Intestino Intestino Intestino Intestino Intestino Intestino

Referencia Bray & Cribb (1998) Wallet & Khon (1987) Ward & Fillingham (1934) Montgomery (1957) Manter (1940)

Tabla 3. Datos comparativos en la morfometría de especies de Opechona (medidas en mm).

L=largo; A=ancho

Neotrop. Helminthol., 8(1), 2014

y 1: 0,96 – 1,16 y para el tercero. El tamaño de

los huevos son muy diferentes en dimensiones

66 – 79,2 x 46,2 – 59,4 µm para el primero, 69,3

– 79,2 x 42,9 – 72,6 µm para el segundo y 96 x 83

µm para el tercero.

Familia Lepocreadiidae Odhner, 1905

Subfamilia: Lepocreadiinae Odhner, 1905.

Opechona pharyngodactyla Manter, 1940

(Figura 6, Tabla 3)

Sitio de infección: Intestino posterior.

Depositado: MUSM 3108.

Prevalencia de infección: 31,31 %

Intensidad media: 6,93.

Abundancia: 2,16.

Comentario

El género Opechona descrita por Looss (1907),

se caracteriza por presentar pseudoesófago, un

saco del cirro claviforme; vesícula excretoria

extendida hacia la parte anterior del cuerpo.

ventral y el tercero Grupo Garrardi (las

vitelógenas alcanzan al menos la bifurcación

intestinal). Los tres especímenes de la familia

Lepocraeadiidae encontrados tienen algunas

características similares con el género

Lepidapedon pero no se visualiza la vesícula

excretoria, y en algunos casos la genitalia por

completo, por esta razón la identificación para

llegar a especie seria dudosa y no se podría

realizar. Por lo tanto, los digeneos son

Lepidapedon sp1, Lepidapedon sp2 y

Lepidapedon sp3 y pertenecerían al grupo III

Garrardi, porque sus vitelógenas que alcanzan al

menos la bifurcación inicial.

Lepidapedon sp1 es el más grande en tamaño a

diferencia de las otras dos especies.

Lepidapedon sp1 y Lepidapedon sp2 y

Lepidapedon sp3 tienen la ventosa ventral

ligeramente más grande que la ventosa oral,

siendo la relación de radio-ventosas 1: 1,04 –

1,23 para el primero, 1: 1 – 1,08 para el segundo

Figura 5. Lepidapedon sp2. Escala 0,28 mm. Figura 6. Opechona faringodactyla. Escala 0,5 mm.

Ñacari & Sánchez

Helminth fauna of Peprilus snyderi

Opechona occidentalis reportado en Estados

Unidos por Montgomery (1957) para

Sebastodes atrovirens Gilbert & Jordan 1880,

difiere por su tamaño corporal que es más grande

en dimensiones, mayor e igual a 8,0 mm de largo

y los huevos son ligeramente más delgados (57 –

75 x 30 – 39) µm. O. austrobacillaris reportado

en Australia por Bray & Cribb (1998) para

Pomatomus saltatrix Linnaeus, 1766, difiere por

su tamaño corporal es mayor en dimensiones

mayor e igual a 6,0 mm de largo y los huevos son

ligeramente más largos (70 – 89 x 35 – 54) µm.

O. bacillaris reportado en Brasil por Wallet &

Khon (1987) en Peprilus paru Linnaeus, 1758,

difiere por presentar una prefaringe muy

reducida en tamaño. O. alaskensis reportado en

Alaska por Ward & Fillingham (1934) para

Toadfish, difiere por presentar un esófago muy

largo. O. pharingodactila reportado en

Colombia por Manter (1940) para Trachinotus

Siempre fue difícil distinguir entre el género

Opechona y el Prodistomun debido a la

similaridad, Bray & Gibson (1990)

mencionaron que el género Opechona es

diferente al Prodistomun debido a que este posee

un uroprocto terminal. Con esa característica

hasta ahora solo existen 10 especies,

denominadas O. bacillaris Molin, 1859, O.

alaskensis Ward & Fillingham, 1934, O.

austrobacillaris Bray & Cribb, 1998, O. cablei

Stunkard, 1980, O. chloroscombri Nahhas &

Cable, 1964, O. occidentalis Montgomery,

1957, O. parvasoma Ching, 1960, O.

pharyngodactyla Manter, 1940, O. pyriforme

(Linton, 1900) and O. sebastodis (Yamaguti,

1934). Algunos tienen el cuerpo delgado y otros

ovalado. Nuestra especie posee el cuerpo

delgado y solo cinco especies poseen un cuerpo

delgado.

Figura 7. Anisakis sp. (Larva L3). (A) Parte anterior. Escala 0,30 mm. (B) Ventrículo. Escala 0,5 mm. (C) Parte posterior. Escala

0,1 mm.

Neotrop. Helminthol., 8(1), 2014

de 9 – 36 mm de longitud, presentar ventrículo

elongado, una cutícula estriada, labios poco

visibles pero con un prominente diente larvario

según Olson et al. (1983), Rocka (2004) and

Dixon (2006).

Hysterothylacium sp. (Larva) (Figura 8)

Sitio de infección: Intestino.

Depositado: MUSM 3110.

Prevalencia de infección: 5,61 %.

Intensidad media: 1,5.

Abundancia: 0,0841.

Comentario

El género Hysterothylacium, se caracteriza por

presentar un esófago provisto de un ventrículo,

apéndice ventricular y ciego intestinal anterior.

Poro excretor situado cerca del anillo nervioso.

(Moravec, 1998). Las muestras colectadas son

Hysterothylacium sp. de acuerdo a las

características presentadas en el género, es de

estadio larvario por no presentar estructura

reproductora completa. Este género es reportado

en peces teleósteos marinos en aguas templadas

y frías (Berland, 1991), aunque pocos peces de

agua dulce han sido registrados como

rhodopus Gill, 1863 es parecido al parásito en

estudio en cuanto a sus dimensiones pero la

característica que más resaltante de esta especie

es un engrosamiento en el margen anterior a la

faringe que llegan a ser los cuatro procesos

digitiformes, característica que los diferencia de

las demás especies de Opechona.

NEMATODA

Familia Anisakidae Ralliet & Henry, 1902

Anisakis sp. (Larva 3) (Figura 7)

Sitio de infección: Mesenterio.

Depositado: MUSM 3109.

Prevalencia de infección: 5,61%.

Intensidad media: 0,83.

Abundancia media: 0,0467.

Comentario

El género Anisakis se caracteriza por un esófago

provisto de un ventrículo elongado. Ausencia de

un apéndice ventricular y ciego intestinal. Poro

genital situado a nivel de la base de los labios;

siendo los peces marinos sus hospederos

(Moravec, 1998). Las muestras colectadas en el

mesenterio, son larvas de Anisakis del tercer

estadio (L3), que se caracteriza por ser gusanos

Figura 8. Hysterothylacium sp. (Larva). (A) Parte anterior. Escala 0,1 mm. (B) Ventrículo. Escala 0,28 mm. (C) Parte anterior.

Escala 0,1 mm.

intermediario) es decir presenta ciclo de vida

directo, por el cuál puede fácilmente infectar a

los cardúmenes de peces. En el Perú también ha

sido reportado para P. medius en la localidad de

Chorrillos (Iannacone & Alvariño, 2008). P.

snyderi es un nuevo hospedero para O.

oaxacensis.

L. cristatum obtuvo el mayor valor de

prevalencia con 92,52%, abundancia con 36,5

individuos e Intensidad media: 39,4; esto se

explicaría conociendo quienes son los

invertebrados que forman parte de la

alimentación del pez y estos podrían llegar a ser

sus hospederos intermediarios, que por lo

general las especies de Lecithocladium

presentan dos intermediarios, el primero puede

ser un gasterópodo prosobranquio y el segundo

un copépodo, ctenóforo y poliqueto

(Køie,1991), medusas, copépodos calanoida o

chaetognatos (Reimer et al., 1975). Esto

demuestra que Lecithocladium posee una larga

amplitud de adaptarse parasitando a diferentes

hospederos intermediarios y esto justificaría su

alta prevalencia observada en las muestras del

presente estudio. En el Perú, Iannacone &

hospederos (Moravec et al. 1985, 1997).

Familia Acuariidae

Sitio de infección: Intestino.

Depositado: MUSM 3111.

Prevalencia de infección: 0,47 %.

Intensidad media: 1.

Abundancia media: 0,0047.

Rusguniella sp. (Larva) (Figura 9)

Comentario

Según la clave de Anderson et al. (2009) el

género Rusguniella se caracteriza por tener

cordones expandidos en esferas laterales en las

extremidades cefálicas en forma de crecientes

con bordes lisos, siendo el único nemátodo

encontrado en el intestino, no se pudo identificar

la especie por estar en estadio larval.

Oaxacotyle oaxacensis fue unos de los más

prevalentes con 88,45 % y esto se debe a que el

parásito es monoxénico (no presenta hospedero

Ñacari & Sánchez

Helminth fauna of Peprilus snyderi

Figura 9. Rusguniella sp. (Larva). (A) Parte anterior. Escala 0,1 mm. (B) Parte posterior. Escala 0,1 mm.

DISCUSIÓN

Neotrop. Helminthol., 8(1), 2014

analis (Jenyns, 1842), Galeichthys peruvianus

Lütken, 1874, Merluccius gayi peruanus

Ginsburg 1954, Mustelus dorsalis Gill, 1864,

Paralichthys adspersus (Steindachner, 1867),

Paralonchurus peruanus (Steindachner, 1875),

Prionace glauca (Linnaeus, 1758), Sardinops

sagax sagax Mann, 1954, Sciaena deliciosa

(Tschudi, 1846), Sciaena starksi Evermann &

Radcliffe 1917, Scomber japonicus peruanus

(Jordán & Hubb, 1925), Scorpaena russula

Jordan & Bollman, 1890 y Trachurus

symmetricus murphyi Ayres, 1855 (Tantalean &

Huiza, 1994).

El n e m át od o de e st a d i o l a r v ar i o

Hysterothylacyum sp., presentó también baja

prevalencia de infección 5,61%. El género

Hysterothylacyum tiene como primer hospedero

intermediario algún copépodo o chaetognato,

como segundo hospedero intermediario peces

teleósteos y como hospedero final a peces

pi sc í v o ro s ( S hi h & J en g , 2 00 2 ) .

Hysterothylacyum fue reportado para Sarda

chiliensis Walford, 1936 y Coryhaena hippurus

Linnaeus, 1758 (Perez et al., 1999, Sarmiento et

al., 1999). Ambas especies de anisákidos llegan

a ser nuevos registros para el hospedero P.

snyderi.

El nemátodo Rusguniella sp. de estado larvario,

obtuvo una prevalencia de 0,47 %

encon t r á ndose sólo un individuo,

probablemente P. snyderi sea el hospedero

intermediario o paraténico (accidental), debido a

que su ciclo de vida es desconocido,

encontrándose las formas adultas en aves del

orden Anseriformes. Rusguniella sp. llega a ser

un nuevo registro para el Perú.

El resultado obtenido en el presente estudio

contribuye al conocimiento acerca de la

biodiversidad parasítica en la Costa Central

Peruana, registrando nueve especies de

helmintos que llegan a ser nuevos registros para

P. snyderi en el Perú. De los cuáles los helmintos

que poseen una prevalencia mayor e igual a 5 %

servirían posteriormente como una herramienta

para estudios en discriminaciones de Stock

(Oliva & Ballón, 2002; Valdivia et al., 2007).

Alvariño (2008) reportan el digeneo

Lecithocladium sp para P. medius,

posiblemente pueda ser L. cristatum.

Posteriormente, Iannacone et al. (2010) reporta

L. cristatum para Stromateus stellatus. En el

presente estudio, P. snyderi llega a ser un nuevo

hospedero para L. cristatum.

Opechona pharingodactyla fue uno de los

prevalentes con 31,31 %, esto se explicaría de

igual forma a la aparición de L. cristatum. El

ciclo de vida de las especies de Opechona es

compleja teniendo a dos hospederos

intermediarios, se ha estudiado el ciclo de vida

de Opechona bacillaris, O. piriformis y O.

cablei, siendo como primer hospedero

intermediario a un gasterópodo prosobranquio

y como segundo hospedero intermediario a un

cnidario, ctenóforo (Bray & Gibson, 1990). En

el Perú, Iannacone & Alvariño (2008) reporta O.

bacillaris para P. medius. O. pharingodactyla es

nuevo registro para el Perú.

Lepidapedon sp1, Lepidapedon sp2 y

Lepidapedon sp3 presentan una baja prevalencia

de infección (9,35 %, 1,87 % y 1,87 %),

respectivamente, esto se debería a la ausencia de

algunas especies de intermediarios que forman

parte del alimento del pez, siendo su ciclo de

vida desconocido en la mayoría de especies de

Lepidapedon. Pero en estudios de L. elongatum

Køie (1985) detecta dos hospederos

intermediarios, el primero gasterópodos y el

segundo variedades de anélidos, algunos

moluscos y equinodermos. El género

Lepìdapedon se reporta por primera vez para el

Perú.

El nemátodo de estadio larvario Anisakis sp.,

presenta una baja prevalencia de infección

5,61% esto explicaría la escasez de sus

hospederos intermediarios como parte del

alimento del pez. El género Anisakis tiene como

primer hospedero intermediario a algún

copépodo o eufausido, como segundo hospedero

intermediario peces teleósteos, como nuestro

pez en estudio y como hospedero final los

mamíferos marinos, siendo otros mamíferos

como el hombre hopederos accidentales. En el

Perú Anisakis fue reportado para Cynoscion

Ñacari & Sánchez

Helminth fauna of Peprilus snyderi

Instituto de Biología de Mexico, 34,

pp.163–203.

A description of

Lecithocladium invasor n. sp. (Digenea:

Hemiuridae) and the pathology

associated with two species of

Hemiuridae in acanthurid fish.

Parasitology research, vol. 87,

pp.666–673.

Catálogo comentado de los peces marinos

del Perú. Publicación Especial del

Instituto del Mar del Perú, Callao. 500 p.

Clave para

identificar los peces marinos del Perú.

Publicación Especial del Instituto del Mar

del Perú. 2 Ed. Callao. 314 p.

Isolation and identification of

Anisakid roundworm larvae in fish. Hea.

Cana. Ottawa., OPFL-2.

Elementos de ictioparasitologia.

Porto: Fundação Eng. António de

Almeida. 339 p.

Métodos de estudo e técnicas

laboratoriais em parasitologia de peixes.

2 ed., Maringá: Eduem. 199 p.

Gulf of Mexico

origin, waters, and biota: Volume I,

biodiversity, Texas A&M University

Press, College Station, 1393 p.

Keys to

the Trematoda, vol 1. CAB International,

Wallingford. 521 p.

Monogenea and Digenea

from fishes. Discovery Reports, vol.36,

pp. 179–266.

Chambers, CB, Carlisle, MS, Dove, AD &

Cribb, TH. 2001.

Chirichigno, FN & Cornejo UM. 2001.

Chirichigno, N & Vélez, J. 1998.

Dixon, BR. 2006.

Eiras, J. 1994.

Eiras, JDC, Takemoto, RM & Pavanelli, GC.

2006.

Felder, DL & Camp, DK. 2009.

Jones, A, Bray, RA & Gibson, DI. 2002.

Gibson, DI. 1976.

Fischer, W, Krupp, F, Schneider, W, Sommer, C,

Carpenter, KE & Niem, V. (eds.). 1995.

Gibson, DI, Jones, A & Bray, RA. 2002.

Guagliardo, SE, Schwerdt, CB, Martorelli, SR,

Galeano, NA & Tanzola, RD 2010.

Guía FAO para Identificación de especies

para los fines de la Pesca. Pacifico

Centro-Oriental. 3 Vols. FAO, Rome.

Keys to

the Trematoda, Volumen 1; Volumen 3.

CABI, Natural History Museum.544 p.

Digenean trematodes of Seriolella porosa

(Pisces, Centrolophidae) in San Matías

Azevedo, RK, Abdallah, VD & Luque, J. 2007.

Amato, JF. 1983.

Anderson, R, Chabaud, A & Willmott, S. 2009.

Berland, B. 1991.

Bray, RA & Cribb, TH. 1998.

Bray, RA & Cribb, TH. 2004.

Bray, RA & Gibson, DI. 1990.

Caballero, E & Hollis, MB. 1963.

Aspectos quantitativos da comunidadede

metazoários parásitos do gordinho

Peprilus paru (Linnaeus, 1758)

(Perciformes: Stromateidae), do litoral do

estado do Rio de Janeiro, Brasil. Revista

Brasileira de Parasitologia Veterinária,

vol. 16, pp. 10-14.

Digenetic trematodes of

percoid fishes of Florianópolis, southern

Brazil--Pleorchiidae, Didymozoidae, and

Hemiuridae, with the description of three

new species. Revista brasileira de

biología, vol.43, pp. 1-99.

Keys to the nematode parasites of

vertebrates: Archival Volume. CAB

International. 463 p.

Hysterothylacium aduncum

(Nematoda) in fish. ICES Identification

leaflets for diseases and parasites of fish

and shellfish, Leaflet No. 44, 4 p.

Lepocreadiidae

(Digenea) of Australian coastal fishes:

new species of Opechona Looss, 1907,

Lepotrema Ozaki, 1932 and Bianium

Stunkard, 1930 and comments on other

species reported for the first time or

poorly known in Australian waters.

Systematic Parasitology, vol.41, pp.123-

148. Species of

Lecithocladium Luhe, 1901 (Digenea,

Hemiuridae) from Australian marine

fishes, with a description of a new species

from various hosts off eastern Australia.

Acta Parasitologica, vol. 49, pp.3-11. The

Lepocreadiidae (Digenea) of fishes of the

north-east Atlantic: review of the genera

Opechona Looss, 1907 and Prodistomum

Linton, 1910. Systematic Parasitology,

vol.15, pp.159-202. Helmintos de

peces de aguas mexicanas del Pacifico

XXIII. Descripción de cuatro nuevos

monogeneos y una breve consideración

sobre nomenclatura de esta Clase. Anales

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

Neotrop. Helminthol., 8(1), 2014

Ecological indices of parasites of

Scartichthys gigas (Steindachner, 1876)

(Perciformes: Blenniidae) of the coasts of

Lima, Peru. Neotropical Helminthology,

vol. 6, pp. 191 - 203. Keys to

the Trematoda. Vol. 2. CAB International

and The Natural History Museum,

Wallingford. 768 p.

On the morphology and life-

history of Lepidapedon elongatum

(Lebour, 1908) Nicoll, 1910 (Trematoda,

Lepocreadiidae). Ophelia, vol. 24,

pp.135-153.

Aspects of the morphology and

life cycle of Lecithocladium excisum

(Digenea, Hemiuridae), a parasite of

Scomber spp. International journal for

parasitology, vol. 21, pp.597-602.

Trematodes of

marine fishes from the Peruvian faunistic

province (Peru and Chile), with

description of Lecithochirium callaoensis

n. sp. and new records. Revista de

Biología Marina, vol.28, pp.271-286.

Synopsis of

the parasites of fishes of Canada:

Supplement (1978-1993), Canadian

Government Publishing. 265 p.

Digenetic trematodes of

fishes from the Galapagos Islands and the

neighboring Pacific. Allan Hancock

Pacific Expeditions, vol. 2, pp.329–497.

Additional

hemiurid trematodes from Hawaiian

Jones, A, Bray, RA & Gibson, DI. 2005.

Køie, M. 1985.

Køie, M. 1991.

Luque, JL & Oliva, ME. 1993.

Mc Donald, TE & Margolis, L. 1995.

Manter, HW. 1940.

Manter, HW & Pritchard, MH. 1960.

Lebedev, BI. 1984.

Looss, A. 1907.

Manter, H. 1954.

[New taxa of gastrocotylid-

like monogenans.] Parazity Zhivotnykh i

Rastenii [Parasites of animals and plants},

pp. 17-24. [In Russian with English

summary.] Beitrage zur Systematik der

Distomen. Zur Kenntnis der Familie

Hemiuridae. Zoologische Jahrbücher.

Abteilung für Systematik, Geographie

und Biologie der Tier, vol. 26, pp. 65-180,

pIs. i-15.

Some digenetic trematodes

from fishes of New Zealand. Transactions

and Proceedings of the Royal Society of

New Zealand, vol. 82, pp. 475-568.

Gulf, Argentina. Acta Parasitologica, vol.

55, pp. 29-38.

Iannacone, J. 2003.

Iannacone, J. 2004.

Iannacone, J & Alvariño, L. 2008.

Iannacone, J & Alvariño, L 2009.

Iannacone, J, Cárdenas-Callirgos, J & Alvariño,

L. 2010.

Iannacone, J & Alvariño, L. 2011.

Iannacone, J, Cerapio, JP, Cárdenas-Callirgos, J,

Sánchez, K, Briceño, F & Dueñas, A.

2011.

Iannacone, J, Sánchez, V, Olazábal, N, Salvador,

C, Alvariño, L & Molano, J. 2012.

Tres metazoos parásitos de

la cojinoba Seriolella violacea Guichenot

(Pisces, Centrolophidae), Callao, Perú.

Revista Brasileira de Zoologia, vol. 20,

pp. 257-260. Metazoos parásitos de la

mojarrilla Stellifer minor (Tschudi)

(Osteichthyes, Sciaenidae) capturados

por pesquería artesanal en Chorrillos,

Lima, Perú. Revista Brasileira de

Zoología, vol. 21, pp.815-820.

Influencia del

tamaño y sexo de Peprilus medius

(Peters)(Stromateidae: Perciformes)

capturados en Chorrillos, Lima, Perú,

sobre su comunidad parasitaria.

Neotropical Helminthology, vol.2, pp.62-

70. Metazoos

parásitos de Mugil cephalus Linnaeus,

1758 (Mugilidae: Perciformes)

procedentes del Terminal Pesquero de

Chorrillos, Lima, Perú. Neotropical

Helminthology, vol. 3, pp. 15-28.

Ecología comunitaria de los

parásitos de la chilindrina Stromateus

stellatus (Cuvier, 1829) (Perciformes:

Stromateidae) de la zona costera de

Chorrillos, Lima, Perú. Neotropical

Helminthology, vol. 4, pp. 159 -167.

Aspectos

cuantitativos de los parásitos del pejesapo

Sicyases sanguineus (Müller & Troshel,

1843) (Perciformes: Gobiesocidae) de la

zona costera de Chorrillos, Lima, Perú.

Neotropical Helminthology, vol. 5, pp.

56-72.

Comunidades de parásitos en el

trambollo Labrisomus philippii

(Steindachner, 1866) (Perciformes:

Labrisomidae) de la zona costera de

Chorrillos Lima, Perú. Neotropical

Helminthology, vol. 5, pp. 73-84.

Investigaciones Veterinarias del Perú,

vol.10, pp.49-57.

Metacercarien in Planktotieren des

mittleren Atlantik. Wissenschaftliche

Zeitschrift der Pädagogischen

Hochschule 'Liselotte Herrmann'

Güstrow, vol.2, pp.239–258.

Nematodes of the Antarctic

fishes. Polish polar Research., vol. 25, pp.

135 – 152.

Nemátodos parásitos del hombre y de los

animales en el Perú. Revista Peruana de

Parasitología, vol.14, pp.9-65.

Hysterothylacium

aduncum (Nematoda: Anisakidae)

infecting a herbivorous fish, Siganus

fuscescens, off the Taiwanese coast of the

Northwest Pacific. Zoological Studies-

Taipei, vol. 41, pp.208-215.

Sinopsis de los

parásitos de peces marinos de la costa

peruana. Biotempo, vol.1, pp.53-101.

Metazoan parasites of Engraulis ringens as

tools for stock discrimination along the

Chilean coast. Journal of Fish Biology. vol.

70: pp 1504-1511. Some hemiurid

trematodes from Philippine fishes. The

Journal of Parasitology, vol.48, pp.539-

544. Trématodes

parasites de poissons marins du littoral de

Rio de Janeiro, Brésil. Memórias do

Instituto Oswaldo Cruz, vol.82, pp.21-27.

Notes on some

nematodes from fresh water fishes. The

Journal of Parasitology, vol.3, pp.57-64.

Studies on the helminth

fauna of Japan. Part 31. Trematodes of

Reimer, LW, Hnatiuk, S & Rochner, J. 1975.

Rocka, A. 2004.

Sarmiento, L, Tantaleán, M & Huiza, A. 1999.

Shih, HH & Jeng, MS. 2002.

Tantaleán, M & Huiza, A. 1994.

Valdivia IM, Chávez, RA & Oliva, ME. 2007.

Velasquez, CC. 1962.

Wallet, M & Kohn, A. 1987.

Ward, HB & Magasth, IB. 1917.

Yamaguti, S. 1940.

Stafford, J. 1904.

Ward, HB & Fillingham, J. 1934.

Trematodes from Canadian

fishes. Zoologischer Anzeiger - A Journal

of Comparative Zoology, 27: 481-495.

A new

trematode in a toadfish from southeastern

A l a s k a . P r o c e e d i n g s o f t h e

Helminthological Society of Washington,

vol. 1, pp. 25-31.

f i s h e s . P r o c e e d i n g s o f t h e

Helminthological Society of Washington,

vol. 27, pp.165-180.

The use of ecological

terms in parasitology (report of an Ad

Hoc Committee of the American Society

of Parasitologists). The Journal of

Parasitology., vol. 68, pp. 131-133.

Studies on digenetic

trematodes from marine fishes of La Jolla,

California. Transactions of the American

Microscopical Society, vol.76, pp.13-36.

Some fish nematodes from fresh waters in

Hokkaido, Japan. Praha vol. 32, pp. 305

– 316.

Hysterothylacium patagonense n. sp.

(Nematoda: Anisakidae) from freshwater

fishes in Patagonia, Argentina, with a key

to the species of Hysterothylacium in

American freshwater fishes. Systematic

Parasitology, vol. 36, pp. 31 – 38.

Nematodes of freshwater

fishes of the Neotropical Region.

Academia, Publishing House of the

Academy of Sciences of the Czech

Republic. 464 p. Metazoan parasites

of the Chilean hake Merluccius gayi gayi

as a tool for stock discrimination.

Fisheries Research vol. 56, pp. 313-320.

Metazoan parasite

infracommunities in five sciaenids from

the Central Peruvian coast. Memorias do

Instituto Oswaldo Cruz, vol. 93, pp. 175-

180.

Proper identification of anisakine worms.

The American journal of medical

technology, vol. 49, pp. 111-114.

Otobothrium cysticum (Cestoda:

Trypanorhyncha) from the muscle of

butterfishes (Stromateidae). Parasitology

research, vol. 86, pp.41-53. Presencia

de formas parasitarias en peces

comerciales del mar peruano. Revista de

Margolis, L, Esch, GW, Holmes, JC, Kuris, AM

& Schad, GA. 1982.

Montgomery, WR. 1957.

Moravec F, Nagasawa, K & Urawa, S. 1985.

Moravec F, Urawa, S & Coria, CO. 1997.

Moravec, F. 1998.

Oliva ME & Ballón I. 2002.

Oliva, M & Luque, JL. 1998.

Olson, AC, Lewis, MD & Hauser, ML. 1983.

Palm, HW & Overstreet, RM. 2000.

Pérez, I, Chávez, A & Casas, E. 1999.

Ñacari & Sánchez

Helminth fauna of Peprilus snyderi

Neotrop. Helminthol., 8(1), 2014

Zdzitowiecki, K & Wägele, JW. 1997. Antarctic

Digenea. Synopsis of the antartic benthos.

Koeltz Scientific Books. 156 p.

fishes, VII. Japanese Journal of Zoology,

vol.9, pp. 35-108.

Yamaguti, S. 1953. Aus der Medizinischer

Fakultat Okayama. Bd. 7, Heft 4, Systema

helminthiim. Part I. Digenetic trematodes

of fishes. Toyko: Published. 405 p. Received September 9, 2013.

Accepted December 18, 2013.