image/svg+xml
The aim of the study was to determine the speed of displacement-capture of the food (SDCF) and the bioaccumulation of
cadmium in the backbone of
Gambusia punctata
(Poey, 1854). The study was carried out in the San Juan River in Santiago
de Cuba, Cuba. After sampling with five adult specimens, each one was placed in glass aquariums (20 x 20 x 30 cm) with a
o
density of 1 g/L, without continuous flow of water, or oxygenation and room temperature ≈ 29 C. During 48 h, the
swimming pattern was observed, before the provision of breadcrumbs as food in 5 portions of 0.5 g every 3 min. The
concentration of Cd in the backbone of
G. punctata
was quantified. Statistically significant differences were observed in
the SDCF between individuals of
G
.
punctata
, where the shortest time was 4.7±0.06 s, while the longest corresponded with
5.6±0.04 s. There were no statistically significant differences in the accumulated concentration of Cd in the backbone of
G
.
-1
punctata
where the average bioaccumulated concentration was: 0.126±0.006 μg·g. The SDCF time was accepted before
-1
the sustained swim. The concentrations of Cd (0.0126±0.006 μg·g) in the vertebral spine show that they can exist in
individuals of the species, since they coincided with the results described. It is concluded that the swimming behavior was
accepted, but the bioaccumulation of Cd in the vertebral column could compromise the survival of
G
.
punctata
.
ISSN Versión impresa 2218-6425
ISSN Versión Electrónica 1995-1043
Neotropical Helminthology, 20, (), -:
22161enejun 29-36.
ORIGINAL ARTICLE / ARTÍCULO ORIGINAL
1
Centro de Investigaciones Avanzadas y Formación Superior en Educación, Salud y Medio Ambiente ¨AMTAWI¨. Puno,
Perú. george.argota@gmail.com
2
Laboratorio de Parasitología. Facultad de Ciencias Biológicas. Grupo de Investigación “One Health”. Universidad Ricardo
Palma (URP). Lima, Perú. joseiannacone@gmail.com
3
Laboratorio de Ecología y Biodiversidad Animal. Facultad de Ciencias Naturales y Matemática. Grupo de Investigación en
Sostenibilidad Ambiental (GISA), Universidad Nacional Federico Villarreal (UNFV). Lima, Perú.
4
Facultad de Tecnología de la Salud ̈Julio Trigo López ̈. Universidad de Ciencias Médicas de Villa Clara, Cuba.
rigobertofd@informed.sld.cu
5
Centro Meteorológico Provincial de Villa Clara, Cuba. ricardo.oses@vcl.insmet.cu
Corresponding author: george.argota@gmail.com
George Argota-Pérez: https://orcid.org/0000-0003-2560-6749
José Iannacone: http://orcid.org/0000-0003-3699-4732
Rigoberto Fimia-Duarte: https://orcid.org/0000-0001-5237-0810
Ricardo Osés-Rodríguez: https://orcid.org/0000-0002-6885-1413
12,34
George Argota-Pérez; José Iannacone; Rigoberto Fimia-Duarte &
5
Ricardo Osés-Rodríguez
ABSTRACT
Keywords
: aquatic ecosystem – bone tissue – cadmium –
Gambusia punctata
– swimming behavior
Neotropical Helminthology
29
doi:10.24039/rnh20221611388
VELOCITY OF DISPLACEMENT-FOOD CAPTURE AND BIOACCUMULATION TO CADMIUM IN
THE VERTEBRAL SPINE OF
GAMBUSIA PUNCTATA
(POEY, 1854)
VELOCIDAD DE DESPLAZAMIENTO-CAPTURA DE ALIMENTO Y BIOACUMULACIÓN A
CADMIO EN LA ESPINA VERTEBRAL DE
GAMBUSIA PUNCTATA
(POEY, 1854)
Este artículo es publicado por la revista Neotropical Helminthology de la Facultad de Ciencias Naturales y Matemática, Universidad Nacional
Federico Villarreal, Lima, Perú auspiciado por la Asociación Peruana de Helmintología e Invertebrados Afines (APHIA). Este es un artículo de
acceso abierto, distribuido bajo los términos de la licencia Creative Commons Atribución 4.0 Internacional (CC BY 4.0) [https://
creativecommons.org/licenses/by/4.0/deed.es] que permite el uso, distribución y reproducción en cualquier medio, siempre que la obra original
sea debidamente citada de su fuente original.
D
D
D
D
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30
Neotropical Helminthology, 2022, 16(1), ene-jun
INTRODUCCIÓN
El cadmio (Cd), es un metal tóxico que no posee
función biológica conocida (Chen
et al
., 2016), y
puede ser tóxico a dosis bajas. Al acumularse el Cd,
entonces muestra una exposición prolongada y en
los últimos años se le reconoce como un posible
factor etiológico de enfermedades
neurogenerativas (Chin
et al
., 2015; Monaco
et al
.,
2017).
Al igual que otros metales, el Cd afecta la dinámica
de los ecosistemas acuáticos (Jacob
et al
., 2018),
desde la biogeoquímica de los nutrientes hasta el
comportamiento de los organismos (Choudri
et al
.,
2017; Hayes
et al
., 2018), donde el uso de los peces
como herramienta ambiental se reconoce para
evaluar la contaminación y el riesgo ante la
presencia de los metales (Argota
et al
., 2012;
Naddy
et al
., 2015; Ezeonyejiaku
et al
., 2019). En
los peces, el Cd altera la conducta (Eissa
et al
.,
2009; Ferro
et al
., 2019), modifica la morfología
branquial (Ferrari
et al
., 2009), influye en el
desbalance energético (Baudou
et al
., 2017), la
actividad enzimática antioxidante (Almeida
et al
.,
2009), y provoca la ocurrencia de micronúcleos
(Ossana
et al
., 2016).
El hueso, es el órgano principal que se afecta ante la
presencia del Cd, ya que ocurre el desplazamiento
del calcio divalente (Han
et al.
, 2019), (Han
et al
.,
2019), y una vez que se acumula, entonces provoca
un esqueleto más pequeño y menor tasa de
osificación (Sun
et al
., 2018). Asimismo, el Cd
inhibe el desarrollo de los otolitos y altera el control
del equilibrio y la actividad de traslación donde la
vejiga natatoria se afecta e influye en la flotabilidad
y motilidad para nadar, además de la propia
supervivencia de los peces (Capriello
et al
., 2019).
Aunque,
Gambusia punctata
(Poey, 1854) habita
en condiciones ambientales desfavorables como la
contaminación (Argota
et al
., 2020), es probable
que la presencia de Cd en esta especie influya sobre
la captura de las larvas de mosquitos y en este caso,
disminuir el biocontrol lo cual, sería preocupante,
pues es una especie con gran capacidad depredativa
larvaria (Van-Dam & Walton, 2007; Fimia
et al
.,
2016; Dambach, 2020). Esta función de biocontrol
higiénico-sanitaria reviste importancia social
debido al riesgo que representa las larvas de
mosquitos fundamentalmente
Aedes
,
Anopheles
y
Culex
(Kandel
et al
., 2019; Suzuki
et al
., 2020),
para la salud humana (Kebede
et al
., 2017; Kapesa
et al
., 2018, Gachelin
et al
., 2018). Por tanto,
cualquier factor de bioacumulación al Cd, por
consiguiente, se afecta el patrón de natación
(Memtombi
et al
., 2017).
El objetivo del estudio fue determinar la velocidad
de desplazamiento-captura del alimento y la
bioacumulación al cadmio en la espina vertebral de
G. punctata
.
RESUMEN
Palabras clave
: cadmio – conducta natatoria – ecosistema acuático –
Gambusia punctata
– tejido óseo
El objetivo del estudio fue determinar la velocidad de desplazamiento-captura del alimento (VDCA) y la
bioacumulación al cadmio en la espina vertebral de
Gambusia
punctata
(Poey, 1854). El estudio se realizó
en el río San Juan de Santiago de Cuba, Cuba. Después del muestreo con cinco ejemplares adultos, se
colocaron cada uno en acuarios de cristal (20 x 20 x 30 cm) con densidad de 1 g/L, sin flujo continuo de
o
agua, ni oxigenación y temperatura ambiente ≈ 29C. Durante 48 h, se observó el patrón de nado, ante el
suministro de migajas de pan como alimento en 5 raciones de 0,5 g cada 3 min. Se cuantificó la
concentración de Cd en la espina dorsal de
G
.
punctata
. Se observó, diferencias estadísticamente
significativas en la VDCA entre los individuos de
G
.
punctata
, donde el menor tiempo fue de 4,7±0,06 s,
mientras que el mayor correspondió a 5,6±0,04 s. No hubo diferencias estadísticamente significativas en
la concentración acumulada de Cd en la espina dorsal de la
G
.
punctata
donde la concentración promedio
bioacumulada fue: 0,126±0,006 l tiempo de VDCA fue aceptado ante el nado sostenido. Las
-1
μg·g
. E
concentraciones de Cd (0,0126±0,006 ) en la espina vertebral, muestran que pueden existir en la
-1
μg·g
especie, pues coincidió con resultados descritos. Se concluye, que la conducta natatoria fue aceptada, pero
la bioacumulación al Cd en la espina vertebral podría comprometer la supervivencia de la
G. punctata
.
Argota-Pérez
et al.
image/svg+xml
El estudio se realizó en el río San Juan de Santiago
de Cuba, Cuba. Este río, es el más importante de la
ciudad y donde existen pozos que se utilizan para el
abastecimiento de agua potable a la población. Se
muestreó y depositaron en bolsas de nylon con la
misma agua del río, cinco ejemplares adultos (dos
machos y tres hembras) con talla de longitud total
entre 2,1-3,1 cm. Luego se trasladaron a la zona de
experimentación donde se colocó cada pez, en
acuarios de cristal (20 x 20 x 30 cm) con densidad
-1
de 1 g·L, sin flujo continuo de agua, ni
o
oxigenación y temperatura ambiente ≈ 29C.
Durante 48 h, se observó el patrón de nado de los
peces, según la velocidad de desplazamiento hacia
la captura del alimento en la superficie del agua
(Floyd, 1999). La alimentación consistió en
migajas de pan donde el suministro fue con cinco
raciones de 0,5 g cada 3 min. Para la medición de la
velocidad de desplazamiento-captura del alimento
se utilizó, el cronómetro digital de marca
®
Fisherband (exactitud = ).
0,001%
Se aplicó la eutanasia a los ejemplares mediante
hipotermia inmediata, inhibiéndose la función
biológica (Argota
et al
., 2020). Posteriormente, los
o
organismos se colocaron en estufa a 70C durante
48 h para su secado total (Argota
et al
., 2012). Con
una pinza de sujeción lisa y bisturí con mango se
raspó el tejido seco hasta obtener, la espina
vertebral de cada individuo. Se pesó en una balanza
analítica 0,5 g de cada muestra, colocándose en
vasos de precipitados de 250 mL y se adicionó, 5
mL de una mezcla de ácidos HClO:HSO (7:1) y
424
15 mL de HNOconcentrado donde la digestión se
3
efectuó, en una plancha de calentamiento a 80°C,
hasta la evaporación total de la mezcla de ácidos.
31
MATERIALES Y MÉTODOS
Neotropical Helminthology, 2022, 16(1), ene-jun
Se añadió, 5 mL de HNO concentrado y se calentó,
3
hasta la aparición de sales húmedas. Finalmente, se
trasvasó a un frasco volumétrico de 25 mL con la
ayuda de una disolución de ácido nítrico 0,7 M
(Argota
et al
., 2018). La cuantificación del Cd se
realizó, mediante el espectrómetro de absorción
atómica con plasma inductivamente acoplado de
vista axial: Spectroflame-5B282.
Se utilizó el programa estadístico profesional
Statgraphics Centurion 18 para el tratamiento de la
bioacumulación al Cd. La comparación se realizó
mediante el análisis de varianza y el contraste
múltiple de rango fue por la prueba de Bonferroni.
Se consideró, significativos los resultados cuando
p<0,05.
Aspectos éticos: se indica, la exclusión de toda
información indebida, pues se muestra para la
veracidad de los resultados, la gestión científica
desde el registro en revistas indexadas. Para el
muestreo de los ejemplares, no se requirió el
permiso de las autoridades regulatoria. La
eutanasia de los peces fue mediante bolsas con
hielo y que se depositaron en recipientes de cristal
con agua tratada donde se procuró que los
individuos se tranquilizaran durante la inmersión
para la disección y luego, el análisis de la
bioacumulación al Cd.
Se observó, diferencias estadísticamente
significativas (F = 147,17; p = 0,00) en la velocidad
de desplazamiento-captura del alimento entre los
individuos de
G
.
punctata
, donde el menor tiempo
fue de 4,7±0,06 s, mientras que el mayor
correspondió a 5,6±0,04 s. El tiempo velocidad de
RESULTADOS
Cadmium bioaccumulation in
Gambusia punctata
Individuos
Tiempo (s)
Prueba múltiple de rango
(Bonferroni)
1
4,7±0,06
a
5
4,8±0,04
ab
4
4,9±0,06
b
3
5,1±0,05
c
2
5,6±0,04
d
Total
5,02±0,33
Tabla 1.
Tiempo de velocidad de desplazamiento-captura del alimento (s) por los ejemplares de
Gambusia
punctata
.
image/svg+xml
Marín
et al
. (2014), refieren que los peces muestran
alteraciones en el comportamiento del nado,
cambios en movimientos de desplazamiento
cuando existe exposiciones a xenobióticos, aunque
en este estudio, se consideró que el tiempo de
velocidad de desplazamiento-captura del alimento
fue normal en los individuos de la
G
.
punctata
.
Quizás, la diferencia en el tiempo de reacción pudo
obedecer, algún cambio de respuesta sobre las
condiciones de escenario ambiental. Videler &
Wardle (1991) y Fulton (2010), señalan que la
velocidad de nado son características esenciales en
los animales acuáticos como los peces, pues les
permite la supervivencia, reproducirse, escapar
ante el peligro, definir los límites del hábitat y
alimentarse. La capacidad de nado en los peces
depende de diversos factores externos como la
temperatura del agua (Green & Fisher 2004; Zeng
et al
., 2009), agentes tóxicos ambientales
(Hammer, 1995), presencia de parásitos
(Mouritsen & Poulin, 2002) y características
propias del pez, entre ellas, por ejemplo; la edad y
morfología de las aletas (Fulton & Bellwood,
2002).
Ante la medición sobre el tiempo de velocidad de
desplazamiento-captura del alimento, no se
consideró, que existió alteraciones morfológicas y
32
DISCUSIÓN
desplazamiento-captura del alimento en tres de los
individuos fue menor, al valor promedio:
5,02±0,33 s (Tabla 1).
Se observa, que no hubo diferencias
estadísticamente significativas (F = 0,00; p = 1,00)
en la concentración acumulada de Cd en la espina
dorsal de la
G
.
punctata
. La concentración
promedio bioacumulada fue: 0,126±0,006
-1
μg·g
(Tabla 2).
Tabla 2.
Concentración de Cd en la espina dorsal de la
Gambusia
punctata
(). DE = Desviación estándar.
-1
μg·g
Individuos
Promedio
±DE
2
0,0
125±0,0
04
5
0,0
125±0,0
0
7
1
0,0
12
6
±0,0
06
4
0,0
12
6
±0,0
07
3
0,0
126±0,0
0
8
Total
0,0
12
6
±0,
006
fisiológicas en los ejemplares de
G
.
punctata
, pues
su nado fue sostenido y según, Hill
et al
., (2006),
este consiste en mantener una velocidad constante
donde no existe acidificación de los tejidos por
cuanto, se produce catabolismo aeróbico y este
permite una velocidad de nado por periodos
prolongados (Beamish, 1978). Se consideró, el
tiempo de desplazamiento-captura del alimento
como una respuesta aceptada, pues la
G
.
punctata
,
habita en condiciones desfavorables de
contaminación (Argota
et al
., 2016), y está dentro
del género depredador de larvas de mosquitos lo
cual, permite el control de este vector (Hernández
et al
., 2005; Gachelin
et
al
., 2018; Dambach,
2020).
Faucher
et al
. (2008) y Low & Higgs (2015),
mencionan que umbrales elevados a Cd en el medio
acuático, influye en el aumento de la tasa de
crecimiento, lo cual deteriora el comportamiento
social, acumula en los bulbos olfatorios y daña la
mácula sensorial. Diversas concentraciones de
CdCl en «zebrafish»
(Daniorerio)
se han
2
experimentado donde en adultos machos se ha
observado, aumento de apoptosis a una
concentración de efecto más baja (por sus siglas en
inglés: LOEC = 1,9 ppb) (Gonzalez
et al
., 2006),
aumento de células olfatorias muertas: LOEC =
110 ppb (Wang & Gallagher, 2013), cambios en la
morfología y la ultraestructura de la retina,
aumento de la sensibilidad a la luz: LOEC = 183
Neotropical Helminthology, 2022, 16(1), ene-jun
Argota-Pérez
et al.
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33
ppb (Avallone
et al
., 2015). En el caso de las
hembras, acumulación de Cd en ovarios y las
larvas: LOEC = 1000 ppb (Wu
et al
., (2012), óxido
nítrico y malondialdehído en el cerebro y el hígado:
LOEC = 1000 ppb (Zheng
et al
., 2016), y en
juveniles aumento de especies reactivas de oxígeno
2
e inmunotoxicidad: LOEC = 970 ppb al Cd (Zheng
et al
., 2017).
En este estudio, las concentraciones de Cd
(0,0126±0,006 ) en la espina vertebral,
-1
μg·g
muestran que pueden existir daños en la
G
.
punctata
, pues coincide con resultados antes
descritos. Asimismo, Verma
et al
. (2019), indican
que se encontró lesiones en el epitelio branquial,
pérdida de células de la mucosa y la aparición de un
mayor número de células en presencia de
nanopartículas de sulfuro de Cd. Aunque, se
describió que el tiempo de velocidad de
desplazamiento-captura del alimento se consideró
normal, las concentraciones halladas en la espina
vertebral indican la necesidad de continuar con el
monitoreo en esta especie debido a que Bielmyer
et
al
. (2018), refieren que en ambiente de agua dulce
la toxicidad al Cd es mayor y esta información
pudiera perjudicar no solo a la especie, sino a la
salud pública ante una posible proliferación del
mosquito como agente vectorial.
La principal limitación del estudio fue, no realiza
una prueba de histología fotográfica sobre la espina
vertebral de los organismos seleccionados, así
como comparar, el tiempo de velocidad de
desplazamiento-captura del alimento con más de
un ejemplar en los acuarios, pero que se mantengan
en simultáneo cualquier suministro de
alimentación viva tanto en la superficie como en el
fondo de la columna de agua.
Se concluye, que la conducta natatoria fue
aceptada, aunque la concentración bioacumulada
al Cd en la espina vertebral, podría comprometer la
supervivencia de la
G. punctata
.
Almeida, JA, Bareto, RE, Novelli, ELB, Castro, FJ
& Moron, SE. 2009.
Oxidative stress
biomarkers and aggressive behavior in fish
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
exposed to aquatic cadmium
contamination
. Neotropical Ichthyology,
vol. 7, pp. 103-108.
Argota, PG, Argota, CH & Iannacone, J. 2016.
Costo ambiental sostenible relativo a la
variabilidad físicoquímica de las aguas
sobre la disponibilidad de metales en el
ecosistema San Juan, Santiago de Cuba-
Cuba
. The Biologist (Lima), vol. 14, pp.
219-232.
Argota, PG, Fimia, DR, Iannacone, J & Alarcón-
Elbal, PM. 2020.
Crecimiento ante la
respuesta visual y regímenes prolongados
de alimentación en el biorregulador larval
de mosquitos Gambusia punctata Poey,
1854
. Neotropical Helminthology, vol. 14,
pp. 1-6.
Argota, PG, González, PY, Argota, CH, Fimia, DR
& Iannacone, OJ. 2012.
Desarrollo y
bioacumulación de metales pesados en
Gambusia punctata
(Poeciliidae) ante los
efectos de la contaminación acuática
.
Revista Electrónica Veterinaria, vol. 13, pp.
1-12.
Argota, PG, Iannacone, J & Fimia, DR. 2018.
Optimización ácida para la bioextracción
ecotoxicológica de metales en órganos
diana
. The Biologist (Lima), vol. 15, pp.
133-137.
Avallone, B, Agnisola, C, Cerciello, R, Panzuto, R,
Simoniello, P, Cretì, P & Motta, CM. 2015.
Structural and functional changes in the
zebrafish
(Danio rerio)
skeletal muscle after
cadmium exposure
. Cell Biology and
Toxicology, vol. 31, pp. 273-283.
Baudou, FG, Ossana, NA, Castané, PM,
Mastrángelo, MM & Ferrari, L. 2017.
Cadmium effects on some energy
metabolism variables in
Cnesterodon
decemmaculatus
adults
. Ecotoxicology,
vol. 26, pp. 1250-1258.
Beamish, FWH. 1978.
Swimming capacity. In:
Hoar WS & JD Randall (eds). Fish
physiology, pp. 101-187. Academic Press,
New York.
Bielmyer, F, Gretchen, K, Harper, B, Picariello, C
& Albritton, FA. 2018.
The influence of
salinity and water chemistry on acute
toxicity of cadmium to two euryhaline fish
species
. Comparative Biochemistry and
Physiology Part C:
Toxicology &
Pharmacology, vol. 214, pp. 23-27.
Neotropical Helminthology, 2022, 16(1), ene-jun
Cadmium bioaccumulation in
Gambusia punctata
image/svg+xml
34
Capriello, T, Grimaldi, MC, Cofone, R, D'Aniello,
S & Ferrandino, I. 2019.
Effects of
aluminium and cadmium on hatching and
swimming ability in developing zebrafish
.
Chemosphere, vol. 222, pp. 243-249.
Chen, P, Miah, MR & Aschner, M. 2016.
Metals
and neurodegeneration
. F1000Research,
vol. 5, 366.
Chin, CM, Navarro, YJ & Quintanilla, VB. 2015.
Environmental pollutants as risk factors for
neurodegenerative disorders: Alzheimer
and Parkinson diseases
. Frontiers in
Cellular Neuroscience
, vol. 9, 124.
Choudri, BS, Charabi, Y, Baawain, M & Ahmed,
M. 2017.
Effects of pollution on freshwater
organisms
. Water Environment Research,
vol. 89, pp. 1676-1703.
Dambach, P. 2020.
The use of aquatic predators for
larval control of mosquito disease vectors:
Opportunities and limitations
. Biological
Control, vol. 150, 104357.
Eissa, BL, Ossana, NA, Salibian, A, Ferrari, L &
Pérez, RH. 2009.
Cambios en la velocidad
de nado como indicador del efecto toxico
del cadmio en
Astyanax fasciatus
y
Australoheros facetum. Biología Acuatica,
vol. 26, pp. 83-90.
Ezeonyejiaku, CD, Okoye, CO & Ezenwelu, CO.
2019.
Toxicity and bioaccumulation studies
of heavy metals on a freshwater fish
.
International Journal of Oceanography,
vol.
3, pp. 1-8.
Faucher, K, Fichet, D, Miramand, P & Lagardère,
JP. 2008.
Impact of chronic cadmium
exposure at environmental dose on escape
behaviour in sea bass
(Dicentrarchus labrax
L.; Teleostei, Moronidae
).
Environmental
Pollution,
vol. 151, pp. 148-157.
Ferrari, L, Eissa, BL, Ossana, NA & Salibian, A,
2009.
Effects of sublethal waterborne
cadmium on gills in three teleosteans
species: scanning electron microscope
study
. International Journal of
Environmental Health
Research, vol. 3, pp.
410-426.
Ferro, JP, Campos, LB, Ossana, N, Ferrari, L &
Eissa, BL. 2019.
Effects of cadmium on the
behaviour of
Cnesterodon
decemmaculatus. International Journal of
Environment and Health, vol. 4, pp. 372-
379.
Fimia, DR, Iannacone, J, Alarcón, EPM,
Hernández, CN, Armiñana, GR, Cepero,
RO, Cabrera, GAM & Zaita, FY. 2016.
Potencialidades del control biológico de
peces y copépodos sobre mosquitos
(
Díptera
:
Culicidae
)
de importancia
higiénica-sanitaria en la provincia Villa
Clara, Cuba
. The Biologist (Lima), vol. 14,
pp. 371-386.
Floyd, R. 1999.
Clinical examination of fish in
private collections
. Veterinary
Clinics of
North America: Exotic Animal Practice
,
vol. 2, pp. 247-264.
Fulton, C & Bellwood, D. 2002.
Ontogenetic
habitat use in labrid fishes: an
ecomorphological perspective
. Marine
Ecology Progress Series, vol. 236, pp. 236-
262.
Fulton, C. 2010.
The role of swimming in reef fish
ecology. In: Domenici P & B Kapoor
(
eds
).
Fish swimming: an ethoecological
perspective
, pp. 374-406. Science
Publishers, Enfield.
Gachelin, G, Garner, P, Ferroni, E, Verhave, JP &
Opinel, A. 2018.
Evidence and strategies
for malaria prevention and control: a
historical analysis
. Malaria Journal, vol. 17,
pp. 1-18.
Gonzalez, P, Baudrimont, M, Boudou, A &
Bourdineaud, JP. 2006.
Comparative effects
of direct cadmium contamination on gene
expression in gills, liver, skeletal muscles
and brain of the zebrafish
(Danio rerio).
Biometals, vol. 19, pp. 225-235.
Green, B & Fisher, R. 2004.
Temperature
influences swimming speed, growth and
larval duration in coral reef fish larvae
.
Journal of Experimental Marine Biology
and Ecology, vol. 299, pp. 115-132.
Hammer, C. 1995.
Fatigue and exercise test with
fish. Comparative Biochemistry and
Physiology, vol. 112, pp. 1- 20.
Han, J, Kechun, L, Wang, R, Zhang, Y & Zhou, B.
2019.
Exposure to cadmium causes
inhibition of otolith development and
behavioral impairment in zebrafish larvae.
Aquatic Toxicology,
vol. 214, pp. 1-31.
Hayes, F, Spurgeon, DJ, Lofts, S & Jones, L. 2018.
Evidence-based logic chains demonstrate
multiple impacts of trace metals on
ecosystem services
. Journal of
Environmental Management, vol
. 223, pp.
150-164.
Neotropical Helminthology, 2022, 16(1), ene-jun
Argota-Pérez
et al.
image/svg+xml
35
Hernández, CN, Fimia, DR, Rojas, UJE & García,
ÁGI. 2005.
Metodología para valorar el
potencial y la capacidad depredadora de
los peces larvívoros mediante
observaciones directas en el laboratorio
.
Revista Cubana de Medicina Tropical, vol.
57, pp. 156-158.
Hill, G, Wyse, A & Richard, W. 2006.
Fisiología
animal
, pp. 1038. Editorial Médica
Panamericana, Madrid.
Jacob, JM, Karthik, C, Saratale, RG, Kumar, SS,
Prabakar, D, Kadirvelu, K & Pugazhendhi,
A. 2018.
Biological approaches to tackle
heavy metal pollution: a survey of
literature
.
Journal of Environmental
Management, vol.
217, pp. 56-70.
Kandel, Y, Vulcan, J, Rodriguez, SD, Moore, E,
Chung, HN, Mitra, S, Cordova, JJ,
Martinez, KJL, Moon, AS, Kulkarni, A,
Ettestad, P, Melman, S, Xu, J, Buenemann,
M, Hanley, KA & Hansen, IA. 2019.
Widespread insecticide resistance in
Aedes
aegypti
L. from New Mexico, U
.
S
.
A
. PLoS
One, vol. 14, pp. 1-16.
Kapesa, A, Kweka, EJ, Atieli, H, Afrane, YA,
Kamugisha, E, Lee, MC & Yan, G. 2018.
The current malaria morbidity and
mortality in different transmission settings
in Western Kenya
. PLoS One, vol. 13, pp. 1-
19.
Kebede, DL, Hibstu, DT, Birhanu, BE & Bekele,
FB. 2017.
Knowledge, attitude and practice
towards malaria and associated factors in
Areka Town, Southern Ethiopia:
Community-based cross-sectional Study
.
Journal of Tropical Diseases, vol. 5, pp. 1-
10.
Low, J & Higgs, DM. 2015.
Sublethal effects of
cadmium on auditory structure and function
in fathead minnows
(Pimephales promelas).
Fish Physiology
and
Biochemistry
, vol. 41,
pp. 357-369.
Marín, MGA, Chacón, NRA, Céspedes, RAE &
Rondón, BIS. 2014.
Efectos toxicológicos
generados por la exposición a triclorfón en
un modelo inducido experimentalmente en
cachama blanca
(
Piaractus brachypomus
)
.
CES Medicina Veterinaria y Zootecnia, vol.
9, pp. 190-202.
Memtombi, CC, Gupta, S & Gupta, A. 2017.
Acute
toxicity of cadmium in
Anisops sardeus
(
Heteroptera: Notonectidae
)
: Effects on
adult and nymphal survival and swimming
behavior.
Ecotoxicology and
Environmental Safety, vol. 145, pp. 169-
175.
Monaco, A, Capriello, T, Grimaldi, MC, Schiano,
V & Ferrandino, I. 2017.
Neurodegeneration in zebrafish embryos
and adults after cadmium exposure
.
European Journal of Histochemistry, vol.
61, pp. 28-33.
Mouritsen, KN & Poulin, R. 2002.
Parasitism,
community structure and biodiversity in
intertidal ecosystems
. Parasitology, vol.
124, pp. 101-117.
Naddy, RB, Cohen, AS & Stubblefield, WA. 2015.
The interactive toxicity of cadmium, copper,
and zinc to
Ceriodaphnia dubia
and
rainbow trout
(Oncorhynchus mykiss).
Environmental Toxicology and Chemistry
,
vol. 34, pp. 809-815.
Ossana, NA, Eissa, BL, Baudou, FG, Castané, PM,
Soloneski, S & Ferrari, L. 2016.
Multibiomarker response in ten spotted
live-bearer fish
Cnesterodon
decemmaculatus
(
Jenyns, 1842
)
exposed to
Reconquista river water
.
Ecotoxicology
and Environmental
Safety, vol. 133, pp. 73-
81.
Suzuki, Y, Baidaliuk, A, Miesen, P, Frangeul, L,
Crist, AB, Merkling, SH, Fontaine, MA,
Lequime, S, Moltini, CI, Hervé, BP, van Rij,
LL & Saleh, MC. 2020.
Non-retroviral
endogenous viral element limits cognate
virus replication in
Aedes aegypti
ovaries.
Current Biology, vol. 30, pp. 1-19.
Van-Dam, AR & Walton, WE. 2007.
Comparison
of mosquito control provided by the arroyo
chub (
Gila orcutti
) and the mosquitofish
(Gambusia affinis).
Journal
of the
American
Mosquito
Control,
vol. 23, pp.
430-441.
Verma, Y, Vandna, R, Singh, R & Suresh, V. 2019.
Assessment of cadmium sulphide
nanoparticles toxicity in the gills of a
freshwater fish.
Environmental
Nanotechnology, Monitoring &
Management, vol. 13, pp. 1-23.
Videler, J & Wardle, C. 1991.
Fish swimming stride
by stride: speed limits and endurance
.
Reviews in Fish Biology and Fisheries, vol.
1, pp. 23-40.
Wang, L & Gallagher, EP. 2013.
Role of Nrf2
Neotropical Helminthology, 2022, 16(1), ene-jun
Cadmium bioaccumulation in
Gambusia punctata
image/svg+xml
36
antioxidant defense in mitigating cadmium
induced oxidative stress in the olfactory
system of zebrafish
. Toxicology and
Applied Pharmacology, vol. 266, pp. 177-
186.
Wu, SM, Tsai, PR & Yan, CJ. 2012.
Maternal
cadmium exposure induces mt2 and smtB
mRNA expression in zebrafish
(Danio rerio)
females and their offspring
. Comparative
Biochemistry and Physiology, Part C
, vol.
156, pp. 1-6.
Zeng, L, Cao Z, Fu, S, Peng, J & Wang, Y. 2009.
Effect of temperature on swimming
performance in juvenile southern catfish
(Silurus meriodinalis). Comparative
Biochemistry and Physiology, vol. 153, pp.
125-130.
Zheng, JL, Yuan, SS, Wu, CW & Lv, ZM. 2016.
Acute exposure to waterborne cadmium
induced oxidative stress and
immunotoxicity in the brain, ovary and liver
of zebrafish
(Danio rerio).
Aquatic
Toxicology,
vol. 180, pp. 36-44.
Zheng, JL, Yuan, SS, Wu, CW, Lv, ZM & Zhu, AY.
2017.
Circadian time-dependent
antioxidant and inflammatory responses to
acute cadmium exposure in the brain of
zebrafish
. Aquatic Toxicology, vol. 182, pp.
113-119.
Received March 26, 2022.
Accepted May 18, 2022.
Neotropical Helminthology, 2022, 16(1), ene-jun
Argota-Pérez
et al.